References

ssmu

Бюллетень сибирской медицины

Bulletin of Siberian Medicine

1682-03631819-3684

Siberian State Medical University, the Ministry of Healthcare of the Russian Federation

10.20538/1682-0363-2006-1-21-25

ssmu-3037

Research Article

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ И КЛИНИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

EXPERIMENTAL AND CLINICAL INVESTIGATIONS

Влияние даларгина на желчеотделительную функцию печени

Influence of dalargin on secretory function of liver

Рудин

И. В.

Rudin

I. V.

noemail@neicon.ru

Сибирский государственный медицинский университетRussian Federation

2006

30032006

512125

2006

Рудин И.В.

Rudin I.V.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/3037

В остром опыте на белых крысах изучено влияние периферического и центрального введения даларгина (агонист μ- и δ-опиоидных рецепторов) на скорость секреции и состав секретируемой желчи при интактной и денервированной печени. Показано, что даларгин в значительной степени изменяет состав желчи при обоих способах введения и что эффекты периферической и центральной стимуляции опиоидных рецепторов даларгином на желчеотделение носят разнонаправленный характер. Наличие интактной иннервации печени является условием проявления эффекта центральной стимуляции опиоидных рецепторов даларгином на желчеотделение.

Ifluence of intraperitoneal and intracerebroventricular dalargin ( and  opioid agonist) on bile secretion and composition was studied in white rats with intact and denervated liver. Dalargin was demostrated to alter bile composition significantly both intraperitoneally and intracerebroventricularly and effects were opposite. Intact liver innervation is a must for intracerebroventricular dalargin to have its effect on bile secretion.

опиоидные пептидыдаларгинналоксонсекреция желчи

opioid peptidesdalarginnaloxonesecretion of bile

References1

Акинчиц М.А., Павловская Н.А. Модификация метода оп-ределения билирубина в сыворотке крови // Лаб. дело. 1988. № 12. С. 727-730.

Ганиткевич Я.В., Карбач Я.И. Исследование желчи: Биохимические и биофизические методы. Киев: Наукова думка, 1985. 136 с.

Золоев Г.К., Боброва И.В., Хабарова Н.И., Абиссова Н.А. Некоторые механизмы участия опиоидных пептидов в регуляции углеводного обмена // Бюл. эксперим. биоло-гии и медицины. 1992. № 113 (3). С. 257-259.

Мартынова Е.Р., Медведев О.С. Влияние опиоидных пептидов на регионарную гемодинамику у бодрствую-щих крыс // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1988. № 106 (8). С. 136-139.

Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования в клинике. М.: Медицина, 1987. 407 с.

Мирошниченко В.П., Громашевская Л.Л., Касаткина М.И., Козачек Г.А. Определение содержания желчных кислот и холестерина в желчи // Лаб. дело. 1978. № 3. С. 149-153.

Полонский В.М., Коробов Н.В. Противоязвенное дейст-вие и периферическая опиоидная активность продуктов деградации даларгина // Бюл. ВКНЦ АМН СССР. 1986. № 9 (2). С. 83-86.

Полонский В.М., Ярыгин К.Н., Кривошеев О.Г. и др. Ме-сто приложения (центральное или периферическое) про-тивоязвенного действия синтетического аналога эндо-генных опиоидов даларгина в экспериментальной моде-ли цистеаминовых дуоденальных язв у крыс // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1987. № 103 (4). С. 433-434.

Рудин И.В., Медведев М.А. Опиоидные пептиды модули-руют секрецию основных детерминант желчетока // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1997. № 123 (5). С. 498-500.

Bergasa N.V., Zhou J., Ravi J., Shi Q. The opioid peptide analog D-Ala2-Met-enkephalinamide decreases bile flow by a central mechanism // Peptides. 1999. № 20 (8). Р. 979-986.

Borlongan C.V., Wang Y., Su T.P. Delta opioid peptide (D-Ala2, D-Leu5) enkephalin: linking hibernation and neuroprotection // Front. Biosci. 2004. № 9. Р. 3392-3398.

Chaturvedi K. Opioid peptides, opioid receptors and mecha-nism of down regulation // Indian. J. Exp. Biol. 2003. № 41 (1). Р. 5-13.

Eager K.R., Robinson B.J., Galletly D.C., Miller J.H. En-dogenous opioid modulation of hypercapnic-stimulated res-piration in the rat // Respir. Physiol. 1994. № 96 (1). Р. 13-24.

Hashiguchi Y., Molina P.E., Dorton S. et al. Central opiate mu-receptor-mediated suppression of tissue protein synthesis // Am. J. Physiol. 1997. № 273 (3 Pt. 2). P. 920-927.

Lautt W.W., Carroll A.M. Evaluation of topical phenol as a means of producing autonomic denervation of the liver // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1984. № 62 (7). Р. 849-53.

Li J.P., Kae Yol Lee, Ta-Min Chang, Chey W.Y. MEK inhibits secretin release and pancreatic secretion: roles of secretin-releasing peptide and somatostatin // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2001. № 280 (5). Р. G890-G896.

Ossipov M.H., Lai J., King T. et al. Antinociceptive and no-ciceptive actions of opioids // J. Neurobiol. 2004. № 61 (1). P. 126-148.

Pasternak G.W. Review: pharmacological mechanisms of opioid analgesics // Clin. Neuropharmacol. 1993. № 16. Р. 1-18.

Sacerdote P., Limiroli E., Gaspani L. Experimental evidence for immunomodulatory effects of opioids // Adv. Exp. Med. Biol. 2003. № 521. Р. 106-116.

Smith E.M. Opioid peptides in immune cells // Adv. Exp. Med. Biol. 2003. № 521. Р. 51-68.

Stein C. Opioid receptors on peripheral sensory neurons // Adv. Exp. Med. Biol. 2003. № 521. Р. 69-76.

Von Zastrow M. Opioid receptor regulation // Neuromolecular Med. 2004. № 5 (1). Р. 51-58.

Wood J.D., Galligan J.J. Function of opioids in the enteric nervous system // Neurogastroenterol. Motil. 2004. № 16 (2). Р. 17-28.

Yamanouchi K, Yanaga K, Okudaira S. et al. [D-Ala2, D-Leu5] enkephalin (DADLE) protects liver against ischemia-reperfusion injury in the rat // J. Surg. Res. 2003. № 114 (1). P. 72-77.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.