Мелконян Карина Игоревна – кандидат медицинских наук, доцент, заведующий центральной научно-исследовательской лабораторией (ЦНИЛ)
350063, г. Краснодар, ул. Митрофана Седина, 4
4, Mitrofana Sedina Str., Krasnodar, 350063
Козмай Яна Андреевна – младший научный сотрудник, ЦНИЛ
350063, г. Краснодар, ул. Митрофана Седина, 4
4, Mitrofana Sedina Str., Krasnodar, 350063
Русинова Татьяна Викторовна – кандидат биологических наук, научный сотрудник, ЦНИЛ
350063, г. Краснодар, ул. Митрофана Седина, 4
4, Mitrofana Sedina Str., Krasnodar, 350063
Чупрынин Глеб Павлович – младший научный сотрудник, ЦНИЛ
350063, г. Краснодар, ул. Митрофана Седина, 4
4, Mitrofana Sedina Str., Krasnodar, 350063
Карташевская Марина Игоревна – кандидат медицинских наук, ассистент, кафедра дерматовенерологии
350063, г. Краснодар, ул. Митрофана Седина, 4
4, Mitrofana Sedina Str., Krasnodar, 350063
Карташевский Игорь Игоревич – студент 2-го курса, стоматологический факультет
350063, г. Краснодар, ул. Митрофана Седина, 4
4, Mitrofana Sedina Str., Krasnodar, 350063
Сторожук Сергей Васильевич – научный сотрудник, ЦНИЛ
350063, г. Краснодар, ул. Митрофана Седина, 4
4, Mitrofana Sedina Str., Krasnodar, 350063
Селезнева Ирина Ивановна – кандидат физико-математических наук, ведущий научный сотрудник, лаборатория роста клеток и тканей
142290, г. Пущино, ул. Институтская, 3
3, Institutskaya Str., Pushchino, 142290
Гуревич Константин Георгиевич – доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой ЮНЕСКО «Здоровый образ жизни – залог успешного развития»
127473, г. Москва, ул. Делегатская, 20/1
20/1, Delegatskaya Str., Moscow, 127473
Цель – изучение эффективности использования дермального гидрогеля при экспериментальном лечении поверхностных скарифицированных ран у крыс.
Материалы и методы. Гидрогель получали из свиной дермы химическим методом с применением щелочного гидролиза. В полученных образцах гидрогеля определяли содержание ДНК с помощью спектрофотометра Nano Drop ND-1000. Исследование проведено на 30 самцах крыс породы сфинкс. Крысам наносили скарифицированные раны, затем животные были разделены на две группы: группа 1 – без лечения, или контрольная группа (n = 15), группа 2 – лечение раны дермальным гидрогелем в течение 5 сут (n = 15). На 3-и, 7-е и 14-е сут эксплантировались образцы кожи из области раны, которые подвергались гистологическому исследованию.
Результаты. На 3-и сут эксперимента в образцах кожи животных группы 2 отмечалось умеренное воспаление с поверхностным отеком и дискомплексацией коллагеновых волокон, а контрольной группы – выраженное воспаление с гнойным экссудатом. На 7-е сут эксперимента у крыс контрольной группы наблюдали воспаление, однако отмечали очаги пролиферации многослойного эпителия. Гистологический анализ кожи животных группы 2 продемонстрировал более выраженное полнокровие сосудов, некротические изменения дермы и ее отек. Общая толщина эпидермиса и толщина его рогового слоя была больше, чем в образцах контрольной группы. На 14-е сут эксперимента различия между изучаемыми группами были минимальны, отмечали утолщение эпидермиса у животных группы 2 по сравнению с контрольной группой.
Заключение. В проведенном исследовании продемонстрировано, что при использовании гидрогеля на основе дермы свиньи для лечения скарифицированных ран крыс полное восстановление кожи в пораженной области наступало на 1,5–2 сут быстрее, чем в контрольной группе. Помимо этого было зарегистрировано увеличение количества фибробластов в дерме и утолщение эпидермиса относительно аналогичного показателя у крыс контрольной группы.
Aim. To study the efficacy of dermal hydrogel application in the experimental treatment of superficial scarified wounds in rats.
Materials and methods. The hydrogel was obtained from porcine dermis by alkaline hydrolysis. The DNA concentration was determined using the Nano Drop ND-1000 spectrophotometer. The study included 30 male Sphinx rats. Scarified wounds were created on the rat skin, then the rats were divided into two groups: group 1 – rats without treatment, or control group (n = 15), group 2 – rats with wound treatment with the dermal hydrogel for 5 days, or experimental group (n = 15). On day 3, 7, and 14 of the experiment, we explanted skin samples from the wound area and performed routine H&E staining.
Results. On day 3 of the experiment, moderate inflammation, edema, and collagen fiber disorganization were revealed in the experimental group, and pronounced inflammation with purulent exudate was found in the control group. On day 7 of the experiment, inflammation and foci of stratified epithelium were detected in the control group. The histologic analysis of the skin samples from the experimental group showed pronounced plethora of the vessels, necrotic changes of the dermis, and edema. The total thickness of the epidermis and the thickness of its stratum corneum were greater than in the control group samples. On day 14, the differences between the groups were minimal and the epidermis was thickened in the experimental group animals.
Conclusion. The study examined the effects of the dermal hydrogel on scarified wounds in rats. We found faster skin regeneration (by 1.5–2 days) in the experimental group compared to the controls. Besides, the rats of the experimental group were characterized by an increase in the number of fibroblasts in the dermis and thickened epidermis in the affected area.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.