Чумакова Светлана Петровна – д-р мед. наук, доцент, профессор кафедры патофизиологии
634050, г. Томск, Московский тракт, 2
2, Mosсow Trakt, Tomsk, 634050
Уразова Ольга Ивановна – д-р мед. наук, профессор, член-корр. РАН, зав. кафедрой патофизиологии СибГМУ; профессор кафедры комплексной информационной безопасности электронно-вычислительных систем, ТУСУР
634050, г. Томск, Московский тракт, 2,
634050, г. Томск, пр. Ленина, 40
2, Mosсow Trakt, Tomsk, 634050,
40, Lenina Av., Tomsk, 634050
Шипулин Владимир Митрофанович – д-р мед. наук, профессор, заслуженный деятель науки РФ, науч. руководитель отделения сердечно-сосудистой хирургии, НИИ кардиологии, Томский НИМЦ; профессор, кафедра госпитальной хирургии с курсом сердечно-сосудистой хирургии, СибГМУ
634050, г. Томск, Московский тракт, 2,
634012, г. Томск, ул. Киевская, 111а
2, Mosсow Trakt, Tomsk, 634050,
111a, Kievskaya Str., 634012
Гладковская Маргарита Вадимовна – лаборант-исследователь, кафедра патофизиологии
634050, г. Томск, Московский тракт, 2
2, Mosсow Trakt, Tomsk, 634050
Андреев Сергей Леонидович – канд. мед. наук, врач-сердечно-сосудистый хирург, ст. науч. сотрудник, отделение сердечно-сосудистой хирургии
634012, г. Томск, ул. Киевская, 111а
111a, Kievskaya Str., 634012
Невская Ксения Владимировна – канд. мед. наук, мл. науч. сотрудник, ЦНИЛ
634050, г. Томск, Московский тракт, 2
2, Mosсow Trakt, Tomsk, 634050
Зима Анастасия Павловна – д-р мед. наук, профессор, кафедра патофизиологии
634050, г. Томск, Московский тракт, 2
2, Mosсow Trakt, Tomsk, 634050
Никулина Евгения Леонидовна – канд. мед. наук, доцент, кафедра патофизиологии
634050, г. Томск, Московский тракт, 2
2, Mosсow Trakt, Tomsk, 634050
Цель: оценить характер изменений экспрессии маркеров эндотелиальных прогениторных клеток (VEGFR2, CD34, CD14) и эндотелиоцитов (CD146) в ассоциации с экспрессией панлейкоцитарного маркера CD45 в культуре мононуклеаров крови в присутствии M-CSF у больных ишемической болезнью сердца (ИБС) и здоровых доноров.
Материалы и методы. В исследование вошли 12 больных ИБС со стенокардией напряжения III–V функционального класса и 10 здоровых доноров, у которых утром натощак забирали венозную кровь в количестве 30 мл и стабилизировали гепарином. Мононуклеары крови выделяли на градиенте фиколла 1,077 г/см3 и подвергали иммуномагнитной сепарации с применением антител CD14-MicroBeads и CD34-MicroBead Kit (Miltenyi Biotec B.V. & Co. KG, Германия). Полученную смешанную по CD14 и CD34 культуру мононуклеаров инкубировали 6 сут в полной питательной среде с добавлением M-CSF 50 нг/мл (Cloud-Clone Corp., США) и без него с полной заменой среды и повторным внесением M-CSF на 3-и сут. Через 6 сут оценивали долю позитивных по CD45, CD14, CD34, VEGFR2, CD146 клеток в культуре с помощью антител CD14-FITC, CD34-PE, VEGFR2-Alexa Fluor 647; CD45-FITC и CD146-PerCP (BD Biosciens, США) методом проточной цитофлуориметрии.
Результаты. Показано, что у здоровых доноров доля CD146+ клеток в смешанной культуре мононуклеаров крови при добавлении М-CSF превышает их количество в пробе без его внесения при сопоставимых показателях экспрессии маркеров CD45, CD14 и VEGFR2 между контрольной и стимулированной культурами. У больных ИБС численность CD146+ и VEGFR2+ клеток не изменялась при добавлении М-CSF в культуру мононуклеаров, однако доля CD14+ клеток возрастала, а CD45+ клеток снижалась относительно контрольной пробы. Количество CD34+ клеток было сопоставимым как между контрольной и стимулированной пробами, так и между группами обследованных лиц. При этом у больных ИБС установлено превышение доли VEGFR2+ клеток относительно здоровых доноров в контрольной и стимулированной М-CSF пробах, а для CD14+ мононуклеаров – только в стимулированной культуре мононуклеаров.
Заключение. Формирование ИБС нарушает реакцию мононуклеаров крови на действие М-CSF, увеличивая число CD14+ и уменьшая долю CD45+ клеток в культуре при отсутствии стимулирующего влияния на экспрессию маркера CD146 эндотелиальных клеток. При этом М-CSF не влияет на экспрессию маркеров CD34 и VEGFR2 ЭПК как у больных ИБС, так и у здоровых лиц.
Aim. To evaluate the nature of changes in the expression of markers of endothelial progenitor cells (VEGFR2, CD34, CD14) and endothelial cells (CD146) in association with the expression of the leukocyte common antigen CD45 in the culture of blood mononuclear cells in the presence of M-CSF in patients with coronary heart disease (CHD) and healthy donors.
Materials and methods. The study included 12 patients with CHD with class III–V angina pectoris and 10 healthy donors, from whom 30 ml of venous blood was taken on an empty stomach in the morning and stabilized with heparin. Blood mononuclear cells were isolated by Ficoll density gradient centrifugation (1.077 g / cm3) and subject to immunomagnetic separation using CD14-MicroBeads and CD34-MicroBead Kit (Miltenyi Biotec B.V. & Co. KG, Germany). The resulting CD14+ and CD34+ culture of mononuclear cells was incubated for 6 days in a complete nutrient medium with and without M-CSF 50 ng / ml (Cloud-Clone Corp., USA) with complete replacement of the medium and repeated application of M-CSF on day 3. After 6 days, the proportions of CD45+, CD14+, CD34+, VEGFR2+, and CD146+ cells in the culture were assessed by flow cytometry using CD14-FITC, CD34-PE, VEGFR2-Alexa Fluor 647; CD45-FITC and CD146-PerCP antibodies (BD Biosciences, USA).
Results. It was shown that in healthy donors, the proportion of CD146+ cells in the co-culture of blood mononuclear cells with M-CSF exceeded their number in the sample without it, with comparable expression rates of CD45, CD14, and VEGFR2 markers between the control and stimulated cultures. In CHD patients, the number of CD146+ and VEGFR2+ cells did not change when M-CSF was added to the mononuclear cell culture; however, the proportion of CD14+ cells increased and the proportion of CD45+ cells decreased compared to the control sample. The number of CD34+ cells was comparable both between control and stimulated samples, and between the groups of examined individuals. At the same time, in patients with CHD, an increased proportion of VEGFR2+ cells was found in the control and stimulated samples compared to healthy individuals, while an increased proportion of CD14+ cells was detected only in the stimulated culture.
Conclusion. The development of CHD disrupts the response of blood mononuclear cells to the effect of M-CSF, increasing the number of CD14+ and reducing the proportion of CD45+ cells in the culture in the absence of stimulating effects on the expression of endothelial cell marker CD146. At the same time, M-CSF does not affect the expression of CD34 and VEGFR2 in endothelial progenitor cells both in patients with CHD and in healthy individuals.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.