ssmuБюллетень сибирской медициныBulletin of Siberian Medicine1682-03631819-3684Siberian State Medical University, the Ministry of Healthcare of the Russian Federation10.20538/1682-0363-2026-2-84-90ssmu-6535Research ArticleОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИORIGINAL PAPERSВлияние преаналитических факторов на алгоритм мультиплексного спектроскопического анализа образцов плацентыThe influence of preanalytical factors on the algorithm of multiplex spectroscopy of placental sampleshttps://orcid.org/0000-0003-0842-4169РодионовВ. Э.RodionovV. E.

Родионов Владимир Эдуардович – врач-патологоанатом; соискатель, кафедра патологической анатомии и судебной медицины

Россия, 108814, г. Москва, п. Коммунарка, ул. Сосенский Cтан, 8/3Россия, 625023, г. Тюмень, ул. Одесская, 54 

8/3 Sosensky Stan St., 108814 Kommunarka village, Moscow, Russian Federation54 Odesskaya St., 625023 Tyumen, Russian Federation 

rodionovforever@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-2229-1713АвдалянА. М.AvdalyanA. M.

Авдалян Ашот Меружанович – д-р мед. наук, зав. патологоанатомическим отделением

Россия, 108814, г. Москва, п. Коммунарка, ул. Сосенский Cтан, 8/3

8/3 Sosensky Stan St., 108814 Kommunarka village, Moscow, Russian Federation 

ashot_avdalyan@mail.ruhttps://orcid.org/0009-0006-6895-5278НичипоровА. И.NichiporovA. I.

Ничипоров Андрей Ильич – лаборант-исследователь

Россия, 108814, г. Москва, п. Коммунарка, ул. Сосенский Cтан, 8/3

8/3 Sosensky Stan St., 108814 Kommunarka village, Moscow, Russian Federation

andrei.ni4iporov@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0002-6475-5731ЧерновИ. А.ChernovI. A.

Чернов Игорь Алексеевич – канд. мед. наук., доцент, зав. кафедрой патологической анатомии и судебной медицины

Россия, 625023, г. Тюмень, ул. Одесская, 54

54 Odesskaya St., 625023 Tyumen, Russian Federation

https://orcid.org/0000-0001-6731-9508КукушкинВ. И.KukushkinV. I.

Кукушкин Владимир Игоревич – канд. физ.-мат. наук, ст. науч. сотрудник, лаборатория неравновесных электронных процессов

Россия, 142432, Московская обл., г. Черноголовка, ул. Академика Осипьяна, 2

2 Academician Osipyan St., 142432 Chernogolovka, Moscow Region, Russian Federation 

kukushvi@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-9704-5915АвраамоваС. Т.AvraamovaS. T.

Авраамова София Тариэловна – канд. мед. наук, доцент, Институт клинической морфологии и цифровой патологии

Россия, 119048, г. Москва, ул. Трубецкая, 8/2

8/2 Trubetskaya St., 119992 Moscow, Russian Federation

avraamovast@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0003-3555-0902КирилловЮ. А.KirillovYu. A.

Кириллов Юрий Александрович – д-р мед. наук, профессор, врач-патологоанатом; вед. науч. сотрудник, лаборатория клинической морфологии;  профессор кафедры патологической анатомии и судебной медицины

Россия, 108814, г. Москва, п. Коммунарка, ул. Сосенский Cтан, 8/3

Россия, 625023, г. Тюмень, ул. Одесская, 54

Россия, 117418, г. Москва, ул. Цюрупы, 3

8/3 Sosensky Stan St., 108814 Kommunarka village, Moscow, Russian Federation54 Odesskaya St., 625023 Tyumen, Russian Federation 

3 Tsyurupy St., 117418 Moscow, Russian Federation

youri_kirillov@mail.ruМосковский многопрофильный клинический центр (ММКЦ) «Коммунарка» Департамента здравоохранения города Москвы (ДЗМ); Тюменский государственный медицинский университет (ГМУ)РоссияMoscow Multidisciplinary Clinical Center “Kommunarka”; Tyumen State Medical UniversityRussian FederationМосковский многопрофильный клинический центр (ММКЦ) «Коммунарка» Департамента здравоохранения города Москвы (ДЗМ)РоссияMoscow Multidisciplinary Clinical Center “Kommunarka”Russian FederationТюменский государственный медицинский университет (ГМУ)РоссияTyumen State Medical UniversityRussian FederationИнститут физики твердого тела им. Ю.А. Осипьяна Российской академии наук (ИФТТ РАН)РоссияInstitute of Solid State Physics, Russian Academy of SciencesRussian FederationПервый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)РоссияThe First Sechenov Moscow State Medical UniversityRussian FederationМосковский многопрофильный клинический центр (ММКЦ) «Коммунарка» Департамента здравоохранения города Москвы (ДЗМ); Тюменский государственный медицинский университет (ГМУ); Научно-исследовательский институт морфологии человека (НИИМЧ) им. акад. А.П. Авцына, Российский научный центр хирургии (РНЦХ) им. акад. Б.В. ПетровскогоРоссияMoscow Multidisciplinary Clinical Center “Kommunarka”; Tyumen State Medical University; Avtsyn Research Institute of Human Morphology, Petrovsky National Research Centre of SurgeryRussian Federation2026230720262528490Copyright © Родионов В.Э., Авдалян А.М., Ничипоров А.И., Чернов И.А., Кукушкин В.И., Авраамова С.Т., Кириллов Ю.А., 20262026Родионов В.Э., Авдалян А.М., Ничипоров А.И., Чернов И.А., Кукушкин В.И., Авраамова С.Т., Кириллов Ю.А.Rodionov V.E., Avdalyan A.M., Nichiporov A.I., Chernov I.A., Kukushkin V.I., Avraamova S.T., Kirillov Y.A.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/6535

Цель. Оценка влияния преаналитической подготовки плаценты на результаты рамановской спектроскопии.Материалы и методы. Проспективно исследованы 30 образцов плаценты. Образцы исследовались при помощи спектрометра «ИнСпектр М» (ООО «РамМикс», Россия) на трех этапах преаналитической обработки материала: нативная ткань, после фиксации в формалине, после депарафинирования среза. Статистический анализ включал описательную статистику, тест Шапиро – Уилка, тест Фридмана с пост-хок тестом и корреляцию Спирмена.Результаты. Исследование образцов выявило 33 рамановских пика (415–2915 см–1), большинство из которых распределялись ненормально (критерий Шапиро – Уилка, p < 0,05). Тест Фридмана с пост-хок тестом Дурбина – Коновера выявил группу стабильных аналитов: 19 аналитов сохранили интенсивность после фиксации, 6 – после депарафинирования, а 10 – на всех этапах обработки. Тест Спирмена выявил избирательные взаимосвязи между этапами обработки для отдельных аналитов (890, 1117, 1204, 753, 830 и 2225 см–1).Заключение. Исследование выявило значительное влияние преаналитической подготовки образцов на спектральные характеристики плацентарной ткани, перспективность клинического использования рамановской спектроскопии и необходимость разработки стандартизированных протоколов.

Aim. To evaluate the effect of preanalytical processing of placental samples on the results of Raman spectroscopy.Materials and methods. Thirty placental samples were prospectively studied. The samples were examined using the InSpectr M spectrometer at three stages of preanalytical processing of the material: native tissue, after fixation in formalin, after deparaffinization of the section. Statistical analysis included descriptive statistics, the Shapiro – Wilk test, the Friedman test with the post-hoc analysis, and the Spearman’s rank correlation.Results. The analysis of the samples revealed 33 Raman peaks (415–2,915 cm–1), most of which were distributed abnormally (Shapiro – Wilk test, p < 0.05). The Friedman test with the Durbin – Conover post-hoc analysis revealed a group of stable analytes: 19 analytes retained intensity after fixation, 6 – after deparaffinization, and 10 – at all processing stages. The Spearman’s rank correlation revealed selective relationships between processing stages for individual analytes (890; 1,117; 1,204; 753; 830, and 2,225 cm–1).Conclusion. The study revealed a significant effect of preanalytical sample processing on the spectral characteristics of placental tissue, the prospects for the clinical use of Raman spectroscopy, and the need to develop standardized protocols.

рамановская спектроскопияплацентаограничивающие факторыпреаналитическая обработка материаласпектральный профильRaman spectroscopyplacentalimiting factorspreanalytical material processingspectral profileReferencesГромова О.А., Торшин И.Ю., Чучалин А.Г., Лазебник Л.Б. Ферритин как биомаркер полиорганной патологии: противовоспалительные и антиоксидантные пептиды стандартизированного гидролизата плаценты человека. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2024;(8):113–122. DOI: 10.31146/1682-8658-ecg-228-8-113-122.Громова О.А., Торшин И.Ю., Чучалин А.Г., Лазебник Л.Б. Ферритин как биомаркер полиорганной патологии: противовоспалительные и антиоксидантные пептиды стандартизированного гидролизата плаценты человека. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2024;(8):113–122. DOI: 10.31146/1682-8658-ecg-228-8-113-122.Чернышова А.Л., Черняков А.А., Трущук Ю.М., Юнусова Н.В., Севостьянова Н.В., Архипова Я.И. и др. Молекулярно-генетический и биохимический профили злокачественных новообразований на фоне беременности. Успехи молекулярной онкологии. 2024;11(3):32–40. DOI: 10.17650/2313-805X-2024-11-3-32-40.Чернышова А.Л., Черняков А.А., Трущук Ю.М., Юнусова Н.В., Севостьянова Н.В., Архипова Я.И. и др. Молекулярно-генетический и биохимический профили злокачественных новообразований на фоне беременности. Успехи молекулярной онкологии. 2024;11(3):32–40. DOI: 10.17650/2313-805X-2024-11-3-32-40.Zhuang Z., Zhu M., Huang Y., Liu J., Guo Z., Xiong K. et al. Study of molecule variation in various grades of human nuclear cataracts by confocal micro-Raman spectroscopy. Appl. Phys. Lett. 2012;101(17):173701. DOI: 10.1063/1.4762838.Zhuang Z., Zhu M., Huang Y., Liu J., Guo Z., Xiong K. et al. Study of molecule variation in various grades of human nuclear cataracts by confocal micro-Raman spectroscopy. Appl. Phys. Lett. 2012;101(17):173701. DOI: 10.1063/1.4762838.Zhuang Z., Li N., Guo Z., Zhu M., Xiong K., Chen S. Study of molecule variations in renal tumor based on confocal micro-Raman spectroscopy. J. Biomed. Opt. 2012;18(3):031103. DOI: 10.1117/1.JBO.18.3.031103.Zhuang Z., Li N., Guo Z., Zhu M., Xiong K., Chen S. Study of molecule variations in renal tumor based on confocal micro-Raman spectroscopy. J. Biomed. Opt. 2012;18(3):031103. DOI: 10.1117/1.JBO.18.3.031103.Zhuo S., Chen J., Wu G., Xie S., Zheng L., Jiang X. et al. Quantitatively linking collagen alteration and epithelial tumor progression by second harmonic generation microscopy. Appl. Phys. Lett. 2010;96(21):213704. DOI: 10.1063/1.3441337.Zhuo S., Chen J., Wu G., Xie S., Zheng L., Jiang X. et al. Quantitatively linking collagen alteration and epithelial tumor progression by second harmonic generation microscopy. Appl. Phys. Lett. 2010;96(21):213704. DOI: 10.1063/1.3441337.Zheng-Fei Z., Han-Ping L., Zhou-Yi G., Shuang-Mu Z., BiYing Y., Xiao-Yuan D. Second-harmonic generation as a DNA malignancy indicator of prostate glandular epithelial cells. Chinese Physics B. 2010;19(4):049501. DOI: 10.1088/1674-1056/19/4/049501.Zheng-Fei Z., Han-Ping L., Zhou-Yi G., Shuang-Mu Z., BiYing Y., Xiao-Yuan D. Second-harmonic generation as a DNA malignancy indicator of prostate glandular epithelial cells. Chinese Physics B. 2010;19(4):049501. DOI: 10.1088/1674-1056/19/4/049501.Chen S.J., Zhang Y., Ye X.P., Hu K., Zhu M.F., Huang Y.Y. et al. Study of the molecular variation in pre-eclampsia placenta based on micro-Raman spectroscopy. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2014;290(5):943–946. DOI: 10.1007/s00404-014-3282-9.Chen S.J., Zhang Y., Ye X.P., Hu K., Zhu M.F., Huang Y.Y. et al. Study of the molecular variation in pre-eclampsia placenta based on micro-Raman spectroscopy. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2014;290(5):943–946. DOI: 10.1007/s00404-014-3282-9.Pielesz A., Bobiński R., Biniaś D., Gawłowski A., Waksmańska W., Ulman-Włodarz I. et al. FT Raman spectroscopy in the evaluation of biomarkers of normal and pathological placenta tissue. Molecular and Cellular Biochemistry. 2019;458(1):125–132. DOI: 10.1007/s11010-019-03536-5.Pielesz A., Bobiński R., Biniaś D., Gawłowski A., Waksmańska W., Ulman-Włodarz I. et al. FT Raman spectroscopy in the evaluation of biomarkers of normal and pathological placenta tissue. Molecular and Cellular Biochemistry. 2019;458(1):125–132. DOI: 10.1007/s11010-019-03536-5.Başar G., Parlatan U., Şeninak Ş., Günel T., Benian A., Kalelioğlu İ. Investigation of preeclampsia using raman spectroscopy. Journal of Spectroscopy. 2012;27(4):376793. DOI: 10.1155/2012/376793.Başar G., Parlatan U., Şeninak Ş., Günel T., Benian A., Kalelioğlu İ. Investigation of preeclampsia using raman spectroscopy. Journal of Spectroscopy. 2012;27(4):376793. DOI: 10.1155/2012/376793.Monaghan J.F., Cullen D., Wynne C., Lyng F.M., Meade A.D. Effect of pre-analytical variables on Raman and FTIR spectral content of lymphocytes. Analyst. 2023;148(21):5422–5434. DOI: 10.1039/D3AN00686G.Monaghan J.F., Cullen D., Wynne C., Lyng F.M., Meade A.D. Effect of pre-analytical variables on Raman and FTIR spectral content of lymphocytes. Analyst. 2023;148(21):5422–5434. DOI: 10.1039/D3AN00686G.Bocklitz T., Walter A., Hartmann K., Rösch P., Popp J. How to pre-process Raman spectra for reliable and stable models? Analytica Chimica Acta. 2011;704(1):47–56. DOI: 10.1016/j.aca.2011.06.043.Bocklitz T., Walter A., Hartmann K., Rösch P., Popp J. How to pre-process Raman spectra for reliable and stable models? Analytica Chimica Acta. 2011;704(1):47–56. DOI: 10.1016/j.aca.2011.06.043.Campanella B., Legnaioli S., Onor M., Benedetti E., Bramanti E. The role of the preanalytical step for human saliva analysis via vibrational spectroscopy. Metabolites. 2023;13(3):393. DOI: 10.3390/metabo13030393.Campanella B., Legnaioli S., Onor M., Benedetti E., Bramanti E. The role of the preanalytical step for human saliva analysis via vibrational spectroscopy. Metabolites. 2023;13(3):393. DOI: 10.3390/metabo13030393.Movasaghi Z., Rehman, S., Rehman Ihtesham U. Raman spectroscopy of biological tissues. Applied Spectroscopy Reviews. 2007;42(5):493–541. DOI: 10.1080/05704920701551530.Movasaghi Z., Rehman, S., Rehman Ihtesham U. Raman spectroscopy of biological tissues. Applied Spectroscopy Reviews. 2007;42(5):493–541. DOI: 10.1080/05704920701551530.Roy A., Mantay M., Brannan C., Griffiths S. Placental tissues as biomaterials in regenerative medicine. BioMed Research International. 2022;2022(1):6751456. DOI: 10.1155/2022/6751456.Roy A., Mantay M., Brannan C., Griffiths S. Placental tissues as biomaterials in regenerative medicine. BioMed Research International. 2022;2022(1):6751456. DOI: 10.1155/2022/6751456.Howat W.J., Wilson B.A. Tissue fixation and the effect of molecular fixatives on downstream staining procedures. Methods. 2014;70(1):12–19. DOI: 10.1016/j.ymeth.2014.01.022.Howat W.J., Wilson B.A. Tissue fixation and the effect of molecular fixatives on downstream staining procedures. Methods. 2014;70(1):12–19. DOI: 10.1016/j.ymeth.2014.01.022.Alturkistani H., Faris T., Zuhair M. Histological Stains: A Literature Review and Case Study. Global Journal of Health Science. 2015;8:72–72. DOI: 10.5539/gjhs.v8n3p72.Alturkistani H., Faris T., Zuhair M. Histological Stains: A Literature Review and Case Study. Global Journal of Health Science. 2015;8:72–72. DOI: 10.5539/gjhs.v8n3p72.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.