СВЯЗЬ АКТИВНОСТИ НАД- И НАДФ-ЗАВИСИМЫХ ДЕГИДРОГЕНАЗ ЛИМФОЦИТОВ С ИСХОДОМ РАСПРОСТРАНЕННОГО ГНОЙНОГО ПЕРИТОНИТА

Целью исследования явилось изучение уровней активности НАД(Ф)-зависимых дегидрогеназ лимфоцитов при различных исходах распространенного гнойного перитонита (РГП). Активность ферментов в лимфоцитах крови определялась биолюминесцентным методом. Установлено, что у больных с неблагоприятным исходом РГП в лимфоцитах крови более выраженно осуществляются реакции липидного анаболизма и катаболизма ксенобиотиков. Независимо от исхода заболевания в лимфоцитах крови больных РГП снижены уровни активности ферментов, определяющих интенсивность анаэробного и аэробного дыхания, а также уровень пластических процессов при активации реакций липидного катаболизма и переноса продуктов через глицерол-3-фосфатдегидрогеназу на окислительно-восстановительные реакции гликолиза. Исходя из информативности уровней активности НАД(Ф)-зависимых дегидрогеназ в нейросетевой модели при классификации по исходу заболевания, предлагается метаболический коэффициент, обладающий прогностической значимостью.

1. Суковатых Б.С., Блинков Ю.Ю., Букреева А.Е., Ештокин С.А., Иванов П.А., Жуковский В.А. Применение иммобилизованных форм гипохлорита натрия в комплексном лечении распространенного гнойного перитонита // Вестник хирургии им. И.И. Грекова. 2011.Т. 170, № 6. С. 32–36.

2. Wiest R., Krag A., Gerbes A. Spontaneous bacterial peritoni-tis: recent guidelines and beyond // Gut. 2012. V. 61, № 2. P. 297–310.

3. Савченко А.А., Борисов А.Г. Основы клинической иммунометаболомики. Новосибирск: Наука, 2012. 263 с.

4. Adam T., Waickman A.T., Powell J.D. mTOR, metabolism, and the regulation of T-cell differentiation and function // Immunol. Rev. 2012. V. 249, № 1. P. 43–58.

5. Zeng H., Chi H. mTOR and lymphocyte metabolism // Curr. Opin. Immunol. 2013. V. 25, № 3. P. 347–355.

6. Капустина Т.А., Савченко А.А., Парилова О.В., Коленчу-кова О.А., Маркина А.Н., Белова Е.В. Особенности иммунитета у больных с патологией верхнего респиратор-ного тракта хламидийной этиологии // Журнал микро-биологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2008. № 3. С. 94–95.

7. Sista F., Schietroma M., Santis G.D., Mattei A., Cecilia E.M., Piccione F., Leardi S., Carlei F., Amicucci G. Systemic inflammation and immune response after laparotomy vs laparoscopy in patients with acute cholecystitis, complicated by peritonitis // World J. Gastrointest. Surg. 2013. V. 5, № 4. P. 73–82.

8. Биохимия / под ред. Е.С. Северина. М.: ГЭОТАР-Медиа. 2004. 784 с.

9. Jiang P., Du W., Mancuso A., Wellen K.E., Yang X. Recipro-cal regulation of p53 and malic enzymes modulates metabo-lism and senescence // Nature. 2013. V. 493, № 7434. P. 689–693.

10. Jiang P., Du W., Yang X. A critical role of glucose-6-phosphate dehydrogenase in TAp73-mediated cell prolifera-tion // Cell Cycle. 2013. V. 12, № 24. P. 3720–3726.

11. Le Gall J.-R., Lemeshow S., Saulnier F. A new Simplified Acute Physiology Score (SAPS II) based on a Europe-an/North American multicenter study // JAMA. 1993. V. 270. P. 2957–2963.

12. Савельев В.С., Филимонов М.И., Гельфанд Б.Р. Програм-мируемый перитонеальныйлаваж в лечении распространенного перитонита // Анналы хирургии. 1996. № 3. С. 25–29.

13. Linder M.M., Wacha H., Feldmann U., Wesch G., Streifen-sand R.A., Gundlach E. Der Mannheimer Peritonitis-Index. Ein Instrument zur intraoperativen Prognose der Peritonitis // Chirurg. 1987. V. 58. P.84–91.

14. Vincent J.L., Moreno R., Takala J., Willatts S., De Mendonça A., Bruining H., Reinhart C.K., Suter P.M., Thijs L.G. The SOFA (Sepsis-related Organ Failure Assessment) score to describe organ dysfunction/failure. On behalf of the Working Group on Sepsis-Related Problems of the European Society of Intensive Care Medicine // Intensive Care Med. 1996. V. 22, № 7. P. 707–710.

15. Bone R.S., Balk R.A., Cerra F.B., Dellinger R.P., Fein A.M., Knaus W.A., Schein R.M., Sibbald W.J. American college of Chest Physicians. Society of Critical Care Medicine Consen-sus Conference: Definitions for sepsis and organ failure and guide lines for the use of innovative therapies in sepsis // Crit. CareMed. 1992. V. 20, № 6. P. 864–874.

16. Савченко А.А., Сунцова Л.Н. Высокочувствительное определение активности дегидрогеназ в лимфоцитах периферической крови биолюминесцентным методом // Лаб. дело. 1989. № 11. С. 23–25.

17. Горбань А.Н. Обучение нейронных сетей. СПб: Пара-Граф, 1990. 160 с.

18. de la Roche M., Tessier S.N., Storey K.B. Structural and functional properties of glycerol-3-phosphate dehydrogenase from a mammalian hibernator // Protein J. 2012. V. 31, № 2. P. 109–119.

19. Ham M., Lee J.W., Choi A.H., Jang H., Choi G., Park J., Kozuka C., Sears D.D., Masuzaki H., Kim J.B. Macrophage glucose-6-phosphate dehydrogenase stimulates proinflammatory responses with oxidative stress // Mol. Cell. Biol. 2013. V. 33, № 12. P. 2425–2435.

20. Гаврилюк Л.А., Корчмару И.Ф., Робу М.В. Активность глутатион-зависимых энзимов и глюкозо-6-фосфатдегидро¬геназы в крови больных лимфогранулематозом // Гематология и трансфузиология. 2009. Т. 54, № 2. С. 11–13.

21. Гаврилюк Л.А., Корчмару И.Ф., Робу М.В., Лысый Л.Т. Глутатион-зависимые ферменты и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа в крови больных лимфосаркомой (Неход-жкинской лимфомой) // Биомедицинская химия. 2011. Т. 57. Вып. 2. С. 225– 31.

22. Kim S., Kim S.Y., Ku H.J., Jeon Y.H., Lee H.W., Lee J., Kwon T.K., Park K.M., Park J.W. Suppression of tumorigenesis in mitochondrial NADP(+)-dependent isocitrate dehydrogenase knock-out mice // Biochim. Biophys. Acta. 2014. V. 1842, № 2. P. 135–143.

23. Lee J.H., Park J.W. Attenuated mitochondrial NADP+-dependent isocitrate dehydrogenase activity induces apoptosis and hypertrophy of H9c2 cardiomyocytes // Biochimie. 2014. V. 99. P. 110–118.

24. Пат. 2498300 РФ, МПК G01N 33/48 (2006.01), G01N 33/68 (2006.01). Способ прогнозирования исхода распространенного гнойного перитонита / А.А. Савченко, Д.Э. Здзитовецкий, Ю.С. Винник, А.Г. Борисов, Н.А. Лузан. Опубл. 10.11.2013, Бюл. № 31. 8 с.