Роль опиоидных пептидов в регуляции секретинстимулированной секреции желчи
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2006-3-37-41
Аннотация
В острых опытах на белых крысах изучено влияние внутрибрюшинного введения агониста dи m-опиоидных рецепторов даларгина, d-опиоидных рецепторов DADLE, m-опиоидных рецепторов DAGO и k-опиоидных рецепторов U50488 на стимулированное секретином желчеотделение. Показано, что в различной степени все изученные препараты угнетают желчеток, стимулированный секретином, по показателям скорости желчеотделения и секреции в составе желчных кислот, холестерола, фосфолипидов и билирубина. Высказывается предположение, что опиоидергическая система оказывает на желчеотделение разнонаправленный эффект в зависимости от исходного уровня физиологической секреции.
Ключевые слова
Об авторах
М. А. Медведев
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
И. В. Рудин
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
Список литературы
1. Акинчиц М.А., Павловская Н.А. Модификация метода определения билирубина в сыворотке крови // Лаб. дело. 1988. № 12. С. 727—730.
2. Ганиткевич Я.В., Карбач Я.И. Исследование желчи: биохимические и биофизические методы. Киев: Наукова думка, 1985. 136 с.
3. Коротько Г.Ф., Кадыров Щ.К. Зависимость секреции ферментов поджелудочной железой от дозы октапептида холецистокинина // Мед. журн. Узбекистана. 1986. № 4. C. 46—49.
4. Лишманов Ю.Б., Маслов Л.Н. Опиоидные нейропептиды, стресс и адаптационная защита сердца. Томск: Изд-во Том. ун-та, 1994. 352 c.
5. Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования в клинике. М.: Медицина, 1987. 407 c.
6. Мирошниченко В.П., Громашевская Л.Л., Касаткина М.И., Козачек Г.А. Определение содержания желчных кислот и холестерина в желчи // Лаб. дело. 1978. № 3. С. 149—153.
7. Полонский В.М., Коробов Н.В. Противоязвенное действие и периферическая опиоидная активность продуктов деградации даларгина // Бюл. ВКНЦ АМН СССР. 1986. Т. 9. № 2. С. 83—86.
8. Рудин И.В., Медведев М.А. Опиоидные пептиды снижают литогенность желчи // Сиб. журн. гастроэнтерологии и гепатологии. 1996. Т. 1. № 2. С. 73—75.
9. Рудин И.В., Медведев М.А. Опиоидные пептиды модулируют секрецию основных детерминант желчетока // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1997. Т. 123. № 5. С. 498—500.
10. Alpini G., Glaser S., Robertson W. et al. Large but not small intrahepatic bile duct units are involved in secretin-regulated ductal bile secretion in normal rat liver // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver. Physiol. 1997. V. 272. P. G1064—G1074.
11. Attali B., Saya D., Vogel Z. Kappa-opioid agonists inhibit adenylate cyclase and produce heterologous desensitization in rat spinal cord // J. Neurochem. 1989. V. 52. № 2. P. 360—369.
12. Chaturvedi K. Opioid peptides, opioid receptors and mechanism of down regulation // Indian. J. Exp. Biol. 2003. V. 41. № 1. P. 5—13.
13. Cho W.K., Boyer J.L. Vasoactive intestinal polypeptide is a potent regulator of bile secretion from rat cholangiocytes // Gastroenterology. 1999. V. 117. № 2. P. 420—428.
14. Fukumoto Y., Murakami F., Tateishi A. et al. Effects of secretin on TCDCAor TDCA-induced cholestatic liver injury in the rat // Hepatol. Res. 2002. V. 22. № 3. P. 214—222.
15. Glaser S.S., Rodgers R., Phinizy J.L. et al. Gastrin inhibits secretin-induced ductal secretion by interaction with specific receptors on rat cholangiocytes // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver. Physiol. 1997. V. 273. P. G1061—G1070.
16. Ingram S.L., Williams J.T. Opioid inhibition of Ih via adenylylcyclase // Neuron. 1994. V. 13. № 1. P. 179—186.
17. LeSage G., Glaser S., Gubba S. et al. Regrowth of the rat biliary tree after 70% partial hepatectomy is coupled to increased secretin-induced ductal bile secretion // Gastroenterology. 1996. V. 111. P. 1633—1644.
18. Li J.P, Kae Y.L., Chang T.M., Chey W.Y. MEK inhibits secretin release and pancreatic secretion: roles of secretin-releasing peptide and somatostatin // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2001. V. 280. № 5. P. G890—G896.
19. Mehta C.S., Strada S.J. Effects of acute and continuous administration of morphine on the cyclic AMP responce induced by norepinephrine in rat brain slices // Life Sci. 1994. V. 55. № 1. P. 35—42.
20. Pratner P.L., McGinn T.M., Erickson L.J. et al. Activity of delta opioid receptors to interact with multiple G-proteins is independent of receptor density // J. Biol. Chem. 1994. V. 269. № 32. P. 20548—20553.
21. Schaffalitzky de Muckadell O.B. Secretin in plasma: ups and downs Scand // J. Clin. Lab. Invest. Suppl. 2001. V. 234. P. 105—108.
22. Shimizu I., Hirota M., Matsumura M., Shima K. Effects of gut hormones on bile acid uptake and release in cultured rat hepatocytes // Gastroenterol Jpn. 1987. V. 22. № 2. P. 174—178.
23. Smith A.P., Lee N.M. Opioid receptor interactions: Local and nonlocal, symmetric and asymmetric, physical and functional // Life Sciences. 2003. V. 73. Issue 15. P. 1873—1893.
24. Trauner M., Mennone A., Gigliozzi A. et al. Nitric oxide and guanosine 3',5'-cyclic monophosphate stimulate bile secretion in isolated rat hepatocyte couplets, but not in isolated bile duct units // Hepatology. 1998. V. 28. № 6. P. 1621—1628.
25. Walsh J.H., Mayer E.AI. Gastrointestinal hormones // Gastrointestinal Disease. 5th ed. / Ed. M.H. Sleisenger, J.S. Fordtran. London: Saunders, 1993. P. 18—44.
26. Yamatani K., Saito K., Takahashi K. et al. Hormone-specific combinations of isoforms of adenylyl cyclase and phosphodiesterase in the rat liver // Regul. Pept. 2001. V. 99. № 1. P. 45—52.
Рецензия
Для цитирования:
Медведев М.А., Рудин И.В. Роль опиоидных пептидов в регуляции секретинстимулированной секреции желчи. Бюллетень сибирской медицины. 2006;5(3):37-41. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2006-3-37-41
For citation:
Medvedev M.A., Roudin I.V. The role of opioid peptides in the regulation of secretin-stimulated bile secretion. Bulletin of Siberian Medicine. 2006;5(3):37-41. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2006-3-37-41
Просмотров:
262
Послать статью по эл. почте 