Исследование роли цитоскелета в регуляции сократительной активности гладкомышечных клеток аорты крысы
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2007-1-78-82
Аннотация
Механографическим методом исследовалось влияние модуляции цитоскелета колхицином и цитохалазином В на сократительные реакции гладкомышечных сегментов аорты крысы, вызванные физиологически активными веществами, деполяризацией мембраны и стрикцией клеток. Установлено, что микротубулы и актиновые элементы цитоскелета участвуют в развитии гиперкалиевого и фенилэфрининдуцированного сокращений, а также в расслаблении гладкой мышцы, индуцированном цАМФ. Цитохалазин В более эффективно, чем колхицин, угнетает оба вида сокращений гладкой мышцы аорты. Сократительные реакции при изоосмотической стрикции угнетаются только цитохалазином. Эффективность оперирования цАМФ-опосредованной сигнальной системы зависит от целостности актинового цитоскелета.
Ключевые слова
576.3:599.323.4
Список литературы
1. Баскаков М.Б., Медведев М.А., Ковалев И.В. и др. Меха-низмы регуляции функций гладких мышц вторичными посредниками. Томск: Гавань, 1996. 154 с.
2. Шуба М.Ф., Кочемасова Н.Г. Физиология сосудистых гладких мышц. Киев: Наукова думка, 1988. 250 с.
3. Bárány M., Barron J.T., Gu L., Bárány K. Exchange of the actin-bound nucleotide in intact arterial smooth muscle // J. Biol. Chem. 2001. 276. P. 48398-48403.
4. Chitaley K., Webb R.C. Microtubule depolymerization facili-tates contraction of vascular smooth muscle via increased ac-tivation of RhoA/Rho-kinase // Med. Hypotheses. 2001. V. 56. № 3. P. 381-385.
5. Li S., Moon J., Miao H. et al. Signal transduction in matrix contraction and the migration of vascular smooth muscle cells in three-dimensional matrix // J. Vasc. Res. 2003. Ju-ly-Aug. № 40 (4). P. 378-88.
6. Okada Y. Volume expansion-sensing outward-rectifier Cl-channel: fresh start to the molecular indentity and volume sensor // Am. J. Physiol. 1997. V. 273. P. 755-789.
7. Orlov S.N., Tremblay J., Hamet P. Cell volume in vascular smooth muscle is regulated by bumetanide-sensitive ion transport // Am. J. Physiol. 1996. V. 270. P. 1388-1397.
8. Paul R.J., Bowman P.S., Kolodney M.S. Effects of microtu-bule disruption on force, velocity, stiffness and [Ca(2+)](i) in porcine coronary arteries // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2000. V. 279. № 5. Р. H2493-H2501.
9. Polte T.R., Eichler G.S., Wang N., Ingber D.E. Extracellular matrix controls myosin light chain phosphorylation and cell contractility through modulation of cell shape and cytoskele-tal prestress // Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 2004. № 286 (3). P. 518-528.
10. Shaw L., Ahmed S., Austin C., Taggart M.J. Inhibitors of ac-tin filament polymerisation attenuate force but not global in-tracellular calcium in isolated pressurised resistance arteries // J. Vasc. Res. 2003. V. 40. № 1. P. 1-10.
11. Sperelakis N. Properties of calcium channels in cardiac mus-cle and vascular smooth muscle // Molecular. and Cell Biochem. 1990. V. 99. P. 97-109.
12. Zhang D., Wang Z., Jin N. Microtubule disruption modulates the Rho-kinase pathway in vascular smooth muscle // J. Muscle. Res. Cell. Motil. 2001. V. 22. № 2. P. 193-200.
Рецензия
Для цитирования:
Гусакова C.В. Исследование роли цитоскелета в регуляции сократительной активности гладкомышечных клеток аорты крысы. Бюллетень сибирской медицины. 2007;6(1):78-82. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2007-1-78-82
For citation:
Gousakova S.V. The role of cytoskeleton in the regulation of contractile activity in smooth muscle cells from aorta of rats. Bulletin of Siberian Medicine. 2007;6(1):78-82. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2007-1-78-82
Просмотров:
318
Послать статью по эл. почте 