Механизмы регуляции электрической и сократительной активности гладкомышечных клеток: роль цитоскелета
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2008-4-31-37
Аннотация
Методами механографии и двойного сахарозного моста изучено влияние модуляции цитоскелета колхицином, винбластином, цитохалазином В и доцетакселом на сократительные реакции гладкомышечных клеток, вызванные электрическими, гиперкалиевыми стимулами и растворами с измененной осмолярностью, фенилэфрином. Установлено, что индуцированные изоосмотическим гиперкалиевым раствором сокращения гладких мышц аорты крысы, а также вызванные деполяризующими стимулами потенциалы действия и сокращения гладкомышечных клеток мочеточника морской свинки зависят в большей степени от состояния микрофиламентов, чем микротубул цитоскелета. Cокращения гладкомышечных клеток аорты крысы, вызванные изоосмотической стрикцией, подавляются при разрушении микрофиламентов, тогда как сокращения в гиперосмотическом растворе зависят от состояния как микрофиламентов, так и микротубул. В механизмы действия фенилэфрина на сократительную активность исследуемых мышц вовлечены микрофиламенты цитоскелета гладкомышечных клеток аорты и микротубулы гладкомышечных клеток мочеточника.
При поддержке: Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ, контракты № 07-04-01184 и 08-04-99037.
Об авторах
М. А. Медведев
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
д-р мед. наук, профессор, академик РАМН, зав. кафедрой нормальной физиологии
Томск
М. Б. Баскаков
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
д-р мед. наук, профессор, за.в кафедрой биофизики и функциональной диагностики
Томск
С. В. Гусакова
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
Гусакова Светлана Валерьевна - канд. мед. наук, доцент кафедры биофизики и функциональной диагностики, тел (382-2) 42-09-54
Томск
И. В. Ковалёв
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
д-р мед. наук, профессор кафедры биофизики и функциональной диагностики
Томск
О. С. Мельник
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
аспирант кафедры биофизики и функциональной диагностики
Томск
В. В. Попов
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
студент V курса МБФ
Томск
Л. В. Капилевич
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
д-р мед. наук, профессор кафедры биофизики и функциональной диагностики
Томск
Список литературы
1. Анфиногенова Я.Д. Роль ионного транспорта, сопряженного с изменениями клеточного объема, в механизмах регуляции сократительной функции сосудистых гладкомышечных клеток: Дис. д-ра мед. наук. Томск, 2005. 237 с
2. Баскаков М.Б., Медведев М.А., Ковалев И.В. и др. Механизмы регуляции функций гладких мышц вторичными посредниками. Томск: Гавань, 1996. 154 с
3. Шуба М.Ф., Бурый В.А. Мембранные механизмы возбуждения гладкомышечных клеток // Физиол. журн. 1984. Т. 30. № 5. С. 545-559
4. Шуба М.Ф., Кочемасова Н.Г. Физиология сосудистых гладких мышц. Киев: Наукова думка, 1988. 250 с
5. Anfinogenova Y.J., Kilin A.A., Kovalev I.V. et al. Vascular smooth muscle contraction in hyperosmotic medium: role of Ca2, anion channels and cell volume-sensitive Na,K,2Cl-cotransport // J. Hypertens. 2004. V. 21. P. S101
6. Burgstaller G., Gimona M. Actin cytoskeleton remodelling via local inhibition of contractility at discrete microdomains // J. Cell. Sci. 2004. V. 117 (Pt. 2). Р. 223-231
7. Kuriyama H., Kitamura K., Itoh T., Inoue R. Physiological features of visceral smooth muscle cells, with special reference to receptors and ion channels // Physiol. Rev. 1998. V. 78. № 3. P. 811-920
8. Mongin A.A., Orlov S.N. Mechanisms of cell volume regulation and possible nature of the cell volume sensor // Pathophysiology. 2001. V. 8. P. 77-88
9. Nakamura M., Sunagawa M., Kosugi T., Sperelakis N. Actin filament disruption inhibits L-type Ca2 channel current in cultured vascular smooth muscle cells // Am. J. Physiol. Cell. 2000. V. 279. P. C480-C487
10. Orlov S.N., Tremblay J., Hamet P. Cell volume in vascular smooth muscle is regulated by bumetanide-sensitive ion transport // Am. J. Physiol. 1996. V. 270. P. 1388-1397
11. Paul R.J., Bowman P.S., Kolodney M.S. Effects of microtubule disruption on force, velocity, stiffness and [Ca(2+)](i) in porcine coronary arteries // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2000. V. 279. № 5. H2493—H2501.
12. Shaw L., Ahmed S., Austin C., Taggart M.J. Inhibitors of actin filament polymerisation attenuate force but not global intracellular calcium in isolated pressurised resistance arteries // J. Vasc Res. 2003. V. 40 (1). P. 1—10.
13. Zhang W., Gunst S.J. Dynamic association between α-actinin and β integrin regulates contraction of canine tracheal smooth muscle // Physiology. In Press. 2006.
14. Zhang D., Wang Z., Jin N. Microtubule disruption modulates the Rho-kinase pathway in vascular smooth muscle // J. Muscle Res. Cell Motil. 2001. V. 22. 2. P. 193—200.
Рецензия
Для цитирования:
Медведев М.А., Баскаков М.Б., Гусакова С.В., Ковалёв И.В., Мельник О.С., Попов В.В., Капилевич Л.В. Механизмы регуляции электрической и сократительной активности гладкомышечных клеток: роль цитоскелета. Бюллетень сибирской медицины. 2008;7(4):31-37. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2008-4-31-37
For citation:
Medvedev M.A., Baskakov M.B., Gusakova S.V., Kovalyov I.V., Melnik O.S., Popov V.V., Kapilevich L.V. Mechanisms of regulation electric and contractile activity smooth muscle cells: the role of cytoskeleton. Bulletin of Siberian Medicine. 2008;7(4):31-37. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2008-4-31-37
Просмотров:
471
Послать статью по эл. почте 