The basic function of М-class immunoglobulins (IgM) is permeability regulation of blood-tissue barrier for bacteria and its antigens
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2005-3-38-43
Abstract
Function of antibodies IgM consists in regulation of permeability of a blood-tissue barrier for microorganisms and its antigenes. IgM production in philogenesis and in onthogenesis is the independent form of the immune response. IgM block invasion extracell parasitizing bacteria in tissue. Granulema formation is a variant of IgM function in regulation of permeability blood-tissue barrier for intracell parasitizing bacteria.
The suggested hypothesis allows to use new approaches in therapy of infections with obligatory bacteriemia.
About the Authors
V. M. Perelmuter
Сибирский государственный медицинский университет
Russian Federation
Russian Federation
Yu. N. Odintsov
Сибирский государственный медицинский университет
Russian Federation
Russian Federation
References
1. Жданов В.М., Львов Д.К. Эволюция возбудителей инфекционных болезней. M.: Медицина, 1984. 272 с.
2. Иммунология инфекционного процесса / Под. ред. В.И. Покровского, С.П. Гордиенко, В.И. Литвинова. М., 1994. 305 с.
3. Кондратенко И.В., Сидоренко И.В., Резник И.Б. Первичные иммунодефициты. Методические рекомендации (№ 16). М.: Правительство Москвы. Комитет здравоохранения, 2002. 27 с.
4. Кук A. Регуляция иммунного ответа // Иммунология: Пер. с англ. / Под ред. А. Ройт, Дж. Бростофф, Д. Мейл. М.: Мир, 2000. С. 237–257.
5. Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. Новосибирск: Наука. 1989. 341 с.
6. Медуницын Н.В. Вакцинология. М.: Триада-Х, 1999. 272 с.
7. Михайленко А.А., Базанов Г.А., Покровский В.И., Коненков В.И. Профилактическая иммунология. М.; Тверь: Триада, 2004. 448 с.
8. Одинцов Ю.Н., Перельмутер В.М. Инфекционный процесс как форма симбиоза популяций патогенных бактерий и человека // Сиб. мед. журн. 2002. № 1–2. С. 44–46.
9. Одинцов Ю.Н., Перельмутер В.М. IgM-антитела являются основным индуктором образования гранулем при заболеваниях, вызываемых внутриклеточно паразитирующими бактериями (гипотеза). РИП. ВНТИЦ. 06.03.2002 г. № 72200200007. C. 1–8.
10. Одинцов Ю.Н., Перельмутер В.М. Последствия интернализации и фагоцитоза листерий при инфекционном процессе // Бюл. сиб. медицины. 2003. Т. 2. № 4. С. 120–125.
11. Перельмутер В.М., Одинцов Ю.Н. Основная функция иммуноглобулинов класса М (IgM) – регуляция проницаемости гематотканевого барьера для микроорганизмов и их антигенов (гипотеза). РИП. ВНТИЦ. 02.08.2004 г. № 72200400048. C. 1–7.
12. Ройт А. Основы иммунологии: Пер. с англ. М.: Мир. 1991. 328 с.
13. Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология: Пер. с англ. М.: Мир, 2000. 581 с.
14. Супотницкий М.В. Микроорганизмы, токсины и эпидемии. М.: Вузовская книга, 2000. 376 с.
15. Тернер M.У. Антитела и клеточные рецепторы для них // Иммунология: Пер. с англ. / Под ред. А. Ройт, Дж. Бростофф, Д. Мейл. М.: Мир, 2000. С. 93–113.
16. Фонталин Л.Н. Происхождение антигенраспознающей иммунной системы позвоночных. Молекулярно-биологические и иммунологические аспекты // Иммунология. 1998. № 5. С. 33–44.
17. Фонталин Л.Н. Происхождение антигенраспознающей иммунной системы позвоночных. Сравнительно-иммунологические и эволюционные аспекты // Иммунология. 1999. № 6. С. 4–11.
18. Хаитов Р.М., Игнатьева Г.А., Сидорович И.Г. Иммунология. М.: Медицина, 2000. 432 с.
19. Brandlein S., Lorenz J., Ruoff N., Hensel F. Human monoclonal IgM antibodies with apoptotic activity isolated from cancer patients // Hum. Antibodies. 2002. № 11(4). P. 107–119.
20. Camel J.I., Kim K.S., Tchejeyan G.H., Mahour G.H. Efficacy of passive immunotherapy in experimental postsplenectomy sepsis due to Haemophilus Influenzae type B // J. Pediatr. Surg. 1993. V. 28. № 11. P. 1441–1444.
21. Caplan E.S., Boltansky H., Snyder M.J. et al. Response of traumatized splenectomized patients to immediate vaccination with polyvalent pneumococcal vaccine // J. Trauma. 1983. V. 23. № 9. P. 801–805.
22. Constantopoulos A., Najjar V.A., Smith J.W. Tuftsin deficiency: a new syndrome with defective phagocytosis // J. Pediat. 1972. V. 80. P. 564–572.
23. Сostamagna P., Furst K., Tulli K. et al. Tuberculosis associated with blocking agents against tumor necrosis factor // MMWR. 2004. V. 53 (30). P. 683–687.
24. Ellmark P., Furebring C., Borrebaeck C.A. Preassembly of the extracellular domains of CD40 is not necessary for rescue of mouse B cells from antiimmunoglobulin Minduced apoptosis // Immunology. 2003. V. 108 (4). P. 452–457.
25. Glatman-Freedman A., Mednick A.J., Lendvai N., Casadevall A. Clearance and organ distribution of Mycobacterium tuberculosis lipoarabinomannan (LAM) in the presence and absence of LAM-binding immunoglobulin M // Infect. Immun. 2000. V. 68. № 1. P. 335–341.
26. Goldman D.L., Lee S.C., Casadevall A. Tissue localization of Criptococcus neoformans glukuronoxylomannan in the presence and abcence of specific antibody // Infect. Immun. 1995. V. 63. P. 3448–3453.
27. Green J.B., Shackford S.R., Sise M.J., Powell R.W. Postsplenectomy sepsis in pediatric patients following splenectomy for trauma: proposal for a multiinstitutional study // J. Pediatr. Surg. 1986. V. 21. № 12. P. 1084–1086.
28. Hays D.M., Ternberg J.L., Chen T.T. et al. Postsplenectomy sepsis and other complications following staging laparotomy for Hodgkin,s disease in childhood // J. Pediatr. Surg. 1986. V. 21. № 7. P. 628–632.
29. Kim S.J., Gershov D., Ma X. et al. Opsonization of apoptotic cells and its effect on macrophage and T cell immune responses // Ann. NY Acad. Sci. 2003. V. 987. P. 68–78.
30. Kraal G., Ter Hart H., Meelhuizen C. et al. Marginal zone macrophages and their role in the immune response againt Tindependent type 2 antigens: modulation of the cells with specific antibody // Eur. J. Immunol. 1989. V. 19. P. 675–680.
31. Kruetzmann S., Rosado M.M., Weber H. et al. Human immunoglobulin M memory B cells controlling Streptococcus pneumoniae infections are generated in the spleen // J. Exp. Med. 2003. V. 197 (7). P. 939–945.
32. Nishioka K., Amoscato A.A., Babcock G.F. et al. Tuftsin: an immunomodulating peptide hormone and its clinical potential as a natural biological response modifier. Basic Science Review // Cancer Investigation. 1984. V. 2. № 1. P. 39–49.
33. Prigozy T.L., Sieling P.A., Clemens D. et al. The mannose receptor delivers lipoglycan antigens to endosomes for presentation to T cells by CD1b molecules // Immunity. 1997. V. 6. P. 187–197.
34. Radhakrishnan S., Nguyen L.T., Ciric B. et al. Naturally occurring human IgM antibody that binds B7-DC and potentiates T cell stimulation by dendritic cells // J. Immunol. 2003. V. 170 (4). P. 1830–1838.
35. Sakamoto N., Shibuya K., Simizu Y. et al. A novel Fc receptor for IgA and IgM is expressed on hematopoietic and nonhematopoietic tissues // Eur. J. Immunol. 2001. V. 5. P. 1310–1316.
36. Schlesinger L.S., Kaufman T.M., Iyer S. et al. Differences in mannose receptormediated uptake of lipoarabinomannan from virulent attenuated stains of Mycobacterium tuberculosis by human macrophages // J. Immunol. 1996. V. 157. P. 4568–4575.
37. Shatz D.V., Schinsky M.F., Pais L.B. et al. Immune responses of splenectomized trauma patients to the 23-valent pneumococcal polysaccharide vaccine et 1 versus, 7 versus, 14 days after splenectomy // J. Trauma. 1998. V. 44. № 5. P. 760–765.
38. Tsuji R.F., Szczepanik M., Kawikowa I. et al. B-cell-dependent T-cell respons: IgM antibodies are required to elicit contact sensitivity // J. Exp. Med. 2002. V. 196 (10): P. 1277–1290.
39. Yan J., Vetvicka V., Xia Y. et al. Critical role of Kupffer cell CR3 (CD11b/CD18) in the clearance of IgM-opsonized erythrocytes or soluble beta-glucan // Immunopharmaco-logy. 2000. V. 46. № 1. P. 39–54.
Review
For citations:
Perelmuter V.M., Odintsov Yu.N. The basic function of М-class immunoglobulins (IgM) is permeability regulation of blood-tissue barrier for bacteria and its antigens. Bulletin of Siberian Medicine. 2005;4(3):38-43. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2005-3-38-43
Views:
404
Email this article 