Метаболическая реакция клеток на изменение физико-химического состояния поверхности никелида титана, индуцированное ультрафиолетовым лазерным излучением с длиной волны 266 нм
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2026-2-101-114
Аннотация
Цель: оценка с помощью 3-[4,5-диметилтиазол-2-ил]-2,5-дифенилтетразолия бромида (МТТ) клеточной реакции in vitro на изменение физико-химического состояния (дзета-потенциала, смачиваемости, топографии) поверхности сплава на основе никелида титана (нитинола) после обработки ультрафиолетовым лазерным излучением (УФ-ЛИ) с длиной волны 266 нм.
Материалы и методы. Клеточную культуру MCF-7 инкубировали в течение 24 ч с пластинами из сплава на основе никелида титана, до и после обработки УФ-ЛИ (плотность энергии 0,1 Дж/см2). На образцах измеряли индекс шероховатости Ra (ГОСТ 2789-73) и контактный угол смачивания поверхности водой. Дзета-потенциалы поверхности подложек из нитинола и MCF-7 клеток определяли с использованием анализаторов для плоских образцов (SurPASS 3) и частиц (Litesizer DLS 500) соответственно. Метаболическую активность клеточной культуры определяли с помощью МТТ-теста, рекомендуемого ГОСТ ISO 10993-5-2023 для оценки in vitro цитотоксичности медицинских материалов и изделий. Биоинформатический in silico анализ внутриклеточных сигнальных и метаболических путей осуществляли в базе данных Wiki Pathways.
Результаты. Модификация поверхности УФ-ЛИ статистически значимо снижала токсический отклик (падение метаболической активности) MCF-7 клеток на контакт с подложкой из нитинола. Обработка УФЛИ не влияла на величину дзета-потенциала, но существенно уменьшала контактный угол смачивания водой (с 75 до 8,7°), а также повышала Ra поверхности образцов (с 71,5 до 93,9 нм). Анализ in silico с позиций механотрансдукции показал, что шероховатость и гидрофильность (гидрофобность) нитинола могут индуцировать экспрессию генов в MCF-7 клетках независимо друг от друга, а также через перекрестные молекулярные механизмы. При этом некоторые сигнальные пути (WP5504, WP3680, WP5477, WP3941, WP5046, WP2435) близки к системам, участвующим в редукции МТТ-реагента как маркера программы клеточной смерти, индуцированной метаболическим дисбалансом MCF-7 клеток.
Заключение. Обработка УФ-ЛИ способствует увеличению гидрофильности и (или) наношероховатости, но не дзета-потенциала поверхности подложек из нитинола. Это может инициировать каскад молекулярных механизмов, регулирующих клеточно-тканевые реакции на имплантируемые материалы, включая индукцию воспаления, активацию гемостаза, ангиоспазм и регенерацию кровеносного русла, а также метаболическую активность клеток-мишеней.
Ключевые слова
Об авторах
И. А. ХлусовРоссия
Хлусов Игорь Альбертович – д-р мед. наук, профессор кафедры морфологии и общей патологии, зав. лабораторией клеточных и микрофлюидных технологий; ст. науч. сотрудник
Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2
Россия, 634055, г. Томск, пр. Академический, 2/3
О. В. Кокорев
Россия
Кокорев Олег Викторович – д-р мед. наук, профессор кафедры биохимии и молекулярной биологии с курсом клинической лабораторной диагностики
Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2
А. В. Горохова
Россия
Горохова Анна Владимировна – лаборант-исследователь, кафедра морфологии и общей патологии; инженер
Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2
Россия, 634055, г. Томск, пр. Академический, 2/3
Т. Ф. Насибов
Россия
Насибов Темур Фиррудин оглы – лаборант-исследователь, кафедра морфологии и общей патологии; инженер
Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2
Россия, 634055, г. Томск, пр. Академический, 2/3
С. В. Кривощеков
Россия
Кривощеков Сергей Владимирович – канд. хим. наук, доцент кафедры фармацевтического анализа
Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2
В. В. Чебодаева
Россия
Чебодаева Валентина Вадимовна – канд. тех. наук, науч. cотрудник; мл. науч. сотрудник
Россия, 634055, г. Томск, пр. Академический, 2/3
Россия, 634055, г. Томск, пр. Академический, 2/4
К. С. Бразовский
Россия
Бразовский Константин Станиславович – д-р тех. наук, профессор кафедры медицинской и биологической кибернетики
Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2
М. Ю. Хлусова
Россия
Хлусова Марина Юрьевна – канд. мед. наук, доцент кафедры патофизиологии
Россия, 634050, г. Томск, Московский тракт, 2
Т. Ю. Саблина
Россия
Саблина Татьяна Юрьевна – канд. тех. наук, науч. сотрудник, лаборатория газовых лазеров
Россия, 634055, г. Томск, пр. Академический, 2/3
М. Ю. Кандаурова
Россия
Кандаурова Марина Юрьевна – канд. физ.-мат. наук, науч. сотрудник, лаборатория газовых лазеров
Россия, 634055, г. Томск, пр. Академический, 2/3
И. А. Зятиков
Россия
Зятиков Илья Александрович – мл. науч. сотрудник, лаборатория газовых лазеров
Россия, 634055, г. Томск, пр. Академический, 2/3
Ю. Н. Панченко
Россия
Панченко Юрий Николаевич – д-р физ.-мат. наук, гл. науч. сотрудник, зав. лабораторией газовых лазеров
Россия, 634055, г. Томск, пр. Академический, 2/3
Список литературы
1. Усачева Е.В., Нелидова А.В., Куликова О.М., Флянку И.П. Смертность трудоспособного населения России от сердечно-сосудистых заболеваний. Гигиена и санитария. 2021;100(2):159–165. DOI: 10.47470/0016-9900-2021-100-2-159-165.
2. Camici G.G. What is an optimal stent? Biological requirements of drug eluting stents. Kardiovaskuläre Medizin. 2008;11(1):22–25.
3. Mani G., Feldman M.D., Patel D., Agrawal C.M. Coronary stents: a materials perspective. Biomaterials. 2007;28(9):1689–1710. DOI: 10.1016/j.biomaterials.2006.11.042.
4. U.S. Food and Drug Administration, Center for Devices and Radiological Health. Technical considerations for non-clinical assessment of medical devices containing Nitinol [draft guidance]. Silver Spring (MD): U.S. Food and Drug Administration; 2021 Jul 15 [updated 2021 Jul 15; cited 2024 Aug 10]. Available from: https://www.fda.gov/media/145294/download
5. Fukushima O., Yoneyama T., Doi H., Hanawa T. Corrosion resistance and surface characterization of electrolyzed Ti-Ni alloy. Dental Materials Journal. 2006;25(1):151–60. DOI: 10.4012/dmj.25.151.
6. Pequegnat A., Michael A., Wang J., Lian K., Zhou Y., Khan M.I. Surface characterizations of laser modified biomedical grade NiTi shape memory alloys. Materials Science and Engineering: C. 2015;50:367–378. DOI: 10.1016/j.msec.2015.01.085.
7. Chenrayan V., Vaishnav V., Shahapurkar K., Dhanabal P., Kalayarasan M., Raghunath S. et al. The effect of fs-laser micromachining parameters on surface roughness, bio-corrosion and biocompatibility of nitinol. Optics & Laser Technology. 2024;170:110200. DOI: 10.1016/j.optlastec.2023.110200.
8. Саблина Т.Ю., Панченко М.Ю., Зятиков И.А., Пучикин А.В., Коновалов И.Н., Панченко Ю.Н. Исследование гидрофильности поверхности металлических материалов, модифицированных ультрафиолетовым лазерным излучением. Обработка металлов (технология, оборудование, инструменты). 2024;26(4):218–233. DOI: 10.17212/1994-6309-2024-26.4-218-233.
9. Panchenko M.Yu., Sablina T.Yu., Zyatikov I.A., Puchikin A.V., Panchenko Yu.N. Effect of UV laser treatment on wetting properties of TiNi alloy. Russian Physics Journal. 2024;67(10):1575–1582. DOI: 10.1007/s11182-024-03284-0.
10. Grenadyorov A.S., Chebodaeva V.V., Khlusov I.А., Semin V.O., Madzhara N.E., Solovyev A.A. Effect of a-C:H:- SiOx coating thickness on corrosion resistance and zeta potential level of Ti-6Al-4V. Journal of Vacuum Science & Technology A. 2025;43(2):023401. DOI: 10.1116/6.0004085.
11. Evtushenko D.N., Fateev A.V., Khainovsky M.A., Polishchuk J., Kokorev O.V., Nasibov T.F. et al. Intermolecular interactions, regioselectivity, and biological activity of L-ascorbic acid, nicotinic acid and their cocrystal. CrystEngComm. 2024;26(46):6650–6666. DOI: 10.1039/d4ce00770k.
12. Nasibov T., Gorokhova A., Porokhova E., Shupletsova V., Yurova K., Avdeeva E. et al. A hypothesis of mesenchymal stem cell osteogenic differentiation mediated by chelidonic acid through the calcium import: original research and computer simulation. Histochemistry and Cell Biology. 2025;163(1):14. DOI: 10.1007/s00418-024-02342-5.
13. Nasibov T.F., Gorokhova A.V., Brazovsky K.S., Porokhova E.D., Avdeeva E.Yu., Belousov M.V. et al. The pipeline for in silico prediction of target genes and target metabolic pathways for small molecules, using chelidonic acid as an example. Advanced targets in Biomedicine. 2025;1(1):6–19. DOI: 10.5922/ATB-2025-1-1-1.
14. Korkmaz S., Goksuluk D., Zararsiz G. MVN: An R package for assessing multivariate normality. The R Journal. 2014;6(2):151–162.
15. PMCMRplus (version 1.9.12). Rdocumentation [Internet]. URL: https://www.rdocumentation.org/packages/PMCMRplus/versions/1.9.12.
16. brunnermunzel (version 2.0). Rdocumentation [Internet]. [cited 2024 Jul 21]. URL: https://www.rdocumentation.org/packages/brunnermunzel/versions/2.0
17. Royston P. Remark AS R94: A remark on algorithm AS 181: the W-test for normality. Journal of the Royal Statistical Society. Series C (Applied Statistics). 1995;44(4):547–551. DOI: 10.2307/2986146.
18. Moser B.K., Stevens G.R. Homogeneity of variance in the two-sample means test. The American Statistician. 1992;46(1):19–21. DOI: 10.1080/00031305.1992.10475839.
19. Coombs W.T., Algina J., Oltman D.O. Univariate and multivariate omnibus hypothesis tests selected to control type I error rates when population variances are not necessarily equal. Review of Educational Research. 1996;66(2):137–179. DOI: 10.3102/00346543066002137.
20. Markowski C.A., Markowski E.P. Conditions for the effectiveness of a preliminary test of variance. The American Statistician. 1990;44(4):322–326. DOI: 10.1080/00031305.1990.10475752
21. Smith H.F., The problem of comparing the results of two experiments with unequal errors. Journal of the Council for Scientific and Industrial Research. 1936;9:211–212.
22. Satterthwaite F.E. An approximate distribution of estimates of variance components. Biometrics Bulletin. 1946;2(6):110–114. DOI: 10.2307/3002019.
23. Welch B.L. The significance of the difference between two means when the population variances are unequal. Biometrika. 1938;29(3/4):350–362. DOI: 10.2307/2332010.
24. Moser B.K., Stevens G.R., Watts C.L. The two-sample t test versus Satterthwaite’s approximate F test. Communications in Statistics-Theory and Methods. 1989;18(11):3963–3975. DOI: 10.1080/03610928908830135.
25. Zimmerman D.W., Zumbo B.D. Rank transformations and the power of the Student t test and Welch t test for non-normal populations with unequal variances. Canadian Journal of Experimental Psychology / Revue canadienne de psychologie expérimentale. 1993;47(3):523. DOI: 10.1037/h0078850.
26. Ruxton G.D. The unequal variance t-test is an underused alternative to Student’s t-test and the Mann – Whitney U-test. Behavioral Ecology. 2006;17(4):688–690. DOI: 10.1093/beheco/ark016.
27. Munzel U., Brunner E. Nonparametric tests in the unbalanced multivariate one-way design. Biometrical Journal. 2000; 42(7):837–854. DOI: 10.1002/1521-4036(200011)42:7<837::AID-BIMJ837>3.0.CO;2-S.
28. Brunner E., Munzel U. The nonparametric Behrens – Fisher problem: asymptotic theory and a small-sample approximation. Biometrical Journal. 2000;42(1):17–25. DOI: 10.1002/(SICI)1521-4036(200001)42:1<17::AID-BIMJ17>3.0.CO;2-U.
29. Karch J.D. Psychologists should use Brunner – Munzel’s instead of Mann – Whitney’s U- test as the default nonparametric procedure. Advances in Methods and Practices in Psychological Science. 2021;4(2): 2515245921999602. DOI: 10.1177/2515245921999602.
30. Noguchi K., Konietschke F., Marmolejo-Ramos F., Pauly M. Permutation tests are robust and powerful at 0.5% and 5% significance levels. Behavior Research Methods. 2021;53(6):2712–2724. DOI: 10.3758/s13428-021-01595-5.
31. Celik N. Welch’s ANOVA: Heteroskedastic skew-t error terms. Communications in Statistics-Theory and Methods. 2022;51(9):3065–3076. DOI:10.1080/03610926.2020.1788084.
32. Delacre M., Lakens D., Leys C. Why psychologists should by default use Welch’s t-test instead of Student’s t-test. International Review of Social Psychology. 2017;30(1):92–101. DOI: 10.5334/irsp.82.
33. Tomarken A.J., Serlin R.C. Comparison of ANOVA alternatives under variance heterogeneity and specific noncentrality structures. Psychological Bulletin. 1986;99(1):90. DOI: 10.1037/0033-2909.99.1.90.
34. Levy K.J. An empirical comparison of the ANOVA F-test with alternatives which are more robust against heterogeneity of variance. Journal of Statistical Computation and Simulation. 1978;8(1):49–57. DOI: 10.1080/00949657808810247.
35. Lix L.M., Keselman J.C., Keselman H.J. Consequences of assumption violations revisited: A quantitative review of alternatives to the one-way analysis of variance F test. Review of Educational Research. 1996;66(4):579–619. DOI: 10.3102/00346543066004579.
36. Tamhane A.C. A comparison of procedures for multiple comparisons of means with unequal variances. Journal of the American Statistical Association. 1979:74(366a):471–480. DOI: 10.1080/01621459.1979.10482541.
37. Shingala M.C., Rajyaguru A. Comparison of post hoc tests for unequal variance. International Journal of New Technologies in Science and Engineering. 2015;2(5):22–33.
38. Berridge M.V., Herst P.M., Tan A.S. Tetrazolium dyes as tools in cell biology: new insights into their cellular reduction. Biotechnology Annual Review. 2005;11:127–152. DOI: 10.1016/S1387-2656(05)11004-7.
39. Ghasemi M., Turnbull T., Sebastian S., Kempson I. The MTT Assay: utility, limitations, pitfalls, and Interpretation in bulk and single-cell analysis. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(23):12827. DOI: 10.3390/ijms222312827.
40. Ren Q., Zhu X., Li W., Wu M., Cui S., Ling Y. et al. Fabrication of super-hydrophilic and highly open-porous poly (lactic acid) scaffolds using supercritical carbon dioxide foaming. International Journal of Biological Macromolecules. 2022;205:740–748. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2022.03.107.
41. Long J., Zhong M., Zhang H., Fan P. Superhydrophilicity to superhydrophobicity transition of picosecond laser microstructured aluminum in ambient air. Journal of Colloid and Interface Science. 2015;441:1–9. DOI: 10.1016/j.jcis.2014.11.015.
42. Razi S., Mollabashi M., Madanipour K. Improving the hydrophilicity of metallic surfaces by nanosecond pulsed laser surface modification. Journal of Laser Applications. 2015;27(4):042006-1–042006-9. DOI: 10.2351/1.4928290.
43. Zhu H.Z., Zhang H.C., Ni X.W., Shen Z.H., Lu J. Fabrication of superhydrophilic surface on metallic nickel by sub-nanosecond laser-induced ablation. AIP Advances. 2019;9(8):085308. DOI: 10.1063/1.5111069.
44. Ganash M.A. Anticancer potential of ascorbic acid and inorganic selenium on human breast cancer cell line MCF-7 and colon carcinoma HCT-116. Journal of Cancer Research and Therapeutics. 2021;17(1):122–129. DOI: 10.4103/jcrt.JCRT_989_17.
45. Mobasher M.A. Apoptotic activity and cytotoxic effect of convolvulus spicatus on human breast cancer cell line (MCF-7). Pakistan Journal of Biological Sciences. 2021;24(6):646–655. DOI: 10.3923/pjbs.2021.646.655.
46. Gambardella G., Viscido G., Tumaini B., Isacchi A., Bosotti R., di Bernardo D. A single-cell analysis of breast cancer cell lines to study tumour heterogeneity and drug response. Nature Communications. 2022;13(1):1714. DOI: 10.1038/s41467-022-29358-6.
47. Fayyad R.J., Ali A.N.M., Saeed N.A.A.A.H., Hamzah I.H., Dwaish A.S. Phycosynthesis of silver nanoparticles using Cladophora glomerata and evaluation of their ability to inhibit the proliferation of MCF-7 and L20B cell lines. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention: APJCP. 2022;23(10):3563–3569. DOI: 10.31557/APJCP.2022.23.10.3563.
48. Komarova E.G., Akimova E.B., Kondranova A.M., Porokhova E.D., Nasibov T.F., Syrokvashin M.M. et al. Laser interference microscopy study of the morphometric features of MCF-7 cancer cells contacted with 5-Fluorouracil-loaded calcium phosphate coatings on titanium implants. Materials Chemistry and Physics. 2025;333:130299. DOI: 10.1016/j.matchemphys.2024.130299.
49. Zohrabi T., Habibi N., Zarrabi A., Fanaei M., Lee L.Y. Diphenylalanine peptide nanotubes self-assembled on functionalized metal surfaces for potential application in drug-eluting stent. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 2016;104(9):2280–2290. DOI: 10.1002/jbm.a.35764.
50. Pintor A.V.B., Queiroz L.D., Barcelos R., Primo L.S.G., Maia L.C., Alves G.G. MTT versus other cell viability assays to evaluate the biocompatibility of root canal filling materials: a systematic review. International Endodontic Journal. 2020;53(10):1348–1373. DOI: 10.1111/iej.13353.
51. Ohashi K., Fujiwara S., Mizuno K. Roles of the cytoskeleton, cell adhesion and rho signalling in mechanosensing and mechanotransduction. The Journal of Biochemistry. 2017;161(3):245–254. DOI: 10.1093/jb/mvw082.
52. Burridge K., Monaghan-Benson E., Graham D.M. Mechanotransduction: from the cell surface to the nucleus via RhoA. Philosophical Transactions of the Royal Society B. 2019;374(1779):20180229. DOI: 10.1098/rstb.2018.0229.
53. Janota C.S., Calero-Cuenca F.J., Gomes E.R. The role of the cell nucleus in mechanotransduction. Current Opinion in Cell Biology. 2020;63:204–211. DOI: 10.1016/j.ceb.2020.03.001.
54. Khlusov I.A., Litvinova L.S., Yurova K.A., Khlusova M.Y. Precise tissue bioengineering and niches of mesenchymal stem cells: their size and hierarchy matter. Biocell. 2022;46(6):1365–1373. DOI: 10.32604/biocell.2022.018917.
55. Khlusov I.A., Khlusova M.Yu., Litvinova L.S. Native cell domains as stem cell regulatory microterritories for precise tissue engineering. Next Materials. 2023;1(3):100021. DOI: 10.1016/j.nxmate.2023.100021.
56. Spriano S., Sarath Chandra V., Cochis A., Uberti F., Rimondini L., Bertone E. How do wettability, zeta potential and hydroxylation degree affect the biological response of biomaterials? Materials Science and Engineering: C. 2017;74:542–555. DOI: 10.1016/j.msec.2016.12.107.
57. Song J., Gerecht S. Hydrogels to recapture extracellular matrix cues that regulate vascularization. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 2023;43(8):e291–e302. DOI: 10.1161/ATVBAHA.122.318235.
58. Khlusov I.A., Grenadyorov A.S., Solovyev A.A., Semenov V.A., Zhulkov M.O., Sirota D.A. et al. Endothelial cell behavior and nitric oxide production on a-C:H:SiOx-coated Ti-6Al-4V substrate. International Journal of Molecular Sciences. 2023;24(7):6675. DOI: 10.3390/ijms24076675.
59. Zhang M., Zhao F., Zhu Y., Brouwer L.A., Van der Veen H., Burgess J.K. et al. Physical properties and biochemical composition of extracellular matrix-derived hydrogels dictate vascularization potential in an organ-dependent fashion. ACS Applied Materials & Interfaces. 2024;16(23):29930–29945. DOI: 10.1021/acsami.4c05864.
60. Grenadyorov A.S., Solovyev A.A., Oskomov K.V., Semenov V.A., Zhulkov M.O., Sirota D.A. et al. Morphofunctional reaction of leukocytes and platelets in in vitro contact with a-C:H:SiOx-coated Ti-6Al-4V substrate. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 2023;111(3):309–321. DOI: 10.1002/jbm.a.37470.
61. Belosludtsev K.N., Belosludtseva N.V., Agafonov A.V., Penkov N.V., Samartsev V.N., Lemasters J.J. et al. Effect of surface-potential modulators on the opening of lipid pores in liposomal and mitochondrial inner membranes induced by palmitate and calcium ions. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Biomembranes. 2015;1848(10):2200–2205. DOI: 10.1016/j.bbamem.2015.05.013.
62. Oberleithner H. Quantifying salt sensitivity. Biological Chemistry. 2021;402(12):1597–1602. DOI: 10.1515/hsz-2021-0206.
63. Ghitescu L., Fixman A. Surface charge distribution on the endothelial cell of liver sinusoids. The Journal of Cell Biology. 1984;99(2):639–647. DOI: 10.1083/jcb.99.2.639.
64. Lee K.S., Lee J., Kim H.K., Yeom S.H., Woo C.H., Jung Y.J. et al. Extracellular vesicles from adipose tissue-derived stem cells alleviate osteoporosis through osteoprotegerin and miR- 21-5p. Journal of Extracellular Vesicles. 2021;10(12):e12152. DOI: 10.1002/jev2.12152.
65. Ouyang L., Shaik R., Xu R., Zhang G., Zhe J. Mapping surface charge distribution of single-cell via charged nanoparticle. Cells. 2021;10(6):1519. DOI: 10.3390/cells10061519.
66. Mao A.W., Jiang T.H., Sun X.J., Peng J. Application of chemokine receptor antagonist with stents reduces local inflammation and suppresses cancer growth. Tumor Biology. 2015;36(11):8637–8643. DOI: 10.1007/s13277-015-3557-1.
67. Venault A., Hsu K.J., Yeh L.C., Chinnathambi A., Ho H.T., Chang Y. Surface charge-bias impact of amine-contained pseudozwitterionic biointerfaces on the human blood compatibility. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2017;151:372–383. DOI: 10.1016/j.colsurfb.2016.12.040.
68. Choi S.Y., Habimana O., Flood P., Reynaud E.G., Rodriguez B.J., Zhang N. et al. Material- and feature-dependent effects on cell adhesion to micro injection moulded medical polymers. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2016;145:46–54. DOI: 10.1016/j.colsurfb.2016.04.032.
69. Mirzadeh H., Moghadam E.V., Mivehchi H. Laser-modified nanostructures of PET films and cell behavior. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 2011;98(1):63–71. DOI: 10.1002/jbm.a.33097.
70. Anderson C.R., Gambinossi F., DiLillo K.M., Laschewsky A., Wischerhoff E., Ferri J.K. et al. Tuning reversible cell adhesion to methacrylate-based thermoresponsive polymers: effects of composition on substrate hydrophobicity and cellular responses. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2017;105(9):2416–2428. DOI: 10.1002/jbm.a.36100.
71. Lamichhane S., Anderson J.A., Remund T., Sun H., Larson M.K., Kelly P. et al. Responses of endothelial cells, smooth muscle cells, and platelets dependent on the surface topography of polytetrafluoroethylene. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 2016;104(9):2291–304. DOI: 10.1002/jbm.a.35763.
72. Tan L., Xie Q., Jia X., Guo M., Zhang Y., Tang H. et al. Dynamic measurement of the surface stress induced by the attachment and growth of cells on Au electrode with a quartz crystal microbalance. Biosensors and Bioelectronics. 2009;24(6):1603–1609. DOI: 10.1016/j.bios.2008.08.021.
73. Xie Y., Sproule T., Li Y., Powell H., Lannutti J.J., Kniss D.A. Nanoscale modifications of PET polymer surfaces via oxygen-plasma discharge yield minimal changes in attachment and growth of mammalian epithelial and mesenchymal cells in vitro. Journal of Biomedical Materials Research: An Official Journal of The Society for Biomaterials, The Japanese Society for Biomaterials, and The Australian Society for Biomaterials and the Korean Society for Biomaterials. 2002;61(2):234–245. DOI: 10.1002/jbm.10141.
74. Khorsandi L., Orazizadeh M., Niazvand F., Abbaspour M.R., Mansouri E., Khodadadi A. Quercetin induces apoptosis and necroptosis in MCF-7 breast cancer cells. Bratislavske Lekarske Listy. 2017;118(2):123–128. DOI: 10.4149/BLL_2017_025.
75. Zhu T., Wu J., Zhao N., Cai C., Qian Z., Si F. et al. Superhydrophobic / superhydrophilic Janus fabrics reducing blood loss. Advanced Healthcare Materials. 2018;7(7):e1701086. DOI: 10.1002/adhm.201701086.
76. Wu X.H., Liew Y.K., Mai C.W., Then Y.Y. Potential of superhydrophobic surface for bood-contacting medical devices. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(7):3341. DOI: 10.3390/ijms22073341.
77. Li H., Wang Y., Wu X., Zhou L., Liu L., Fang Y. Blood pump surface roughness: hemocompatibility and machining optimization. ASAIO Journal. 2025;10.1097. DOI: 10.1097/MAT.0000000000002501.
Рецензия
Для цитирования:
Хлусов И.А., Кокорев О.В., Горохова А.В., Насибов Т.Ф., Кривощеков С.В., Чебодаева В.В., Бразовский К.С., Хлусова М.Ю., Саблина Т.Ю., Кандаурова М.Ю., Зятиков И.А., Панченко Ю.Н. Метаболическая реакция клеток на изменение физико-химического состояния поверхности никелида титана, индуцированное ультрафиолетовым лазерным излучением с длиной волны 266 нм. Бюллетень сибирской медицины. 2026;25(2):101-114. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2026-2-101-114
For citation:
Khlusov I.A., Kokorev O.V., Gorokhova A.V., Nasibov T.F., Krivoshchekov S.V., Chebodaeva V.V., Brazovsky K.S., Khlusova M.Yu., Sablina T.Yu., Kandaurova M.Yu., Zyatikov I.A., Panchenko Yu.N. Metabolic reaction of cells to changes in the physical and chemical state of the nitinol surface induced by ultraviolet laser radiation with a wavelength of 266 nm. Bulletin of Siberian Medicine. 2026;25(2):101-114. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2026-2-101-114
JATS XML








































