Факторы ангиогенеза при развитии физиологических и патологических процессов женской гонады
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2016-4-111-119
Аннотация
Обзор литературы посвящен роли различных факторов роста в развитии сосудистого русла яичников. В каждом овариально-менструальном цикле гонады претерпевают изменения, сопровождающиеся образованием и разрушением кровеносных сосудов. Васкуляризация играет важную роль как при физиологических процессах, таких как развитие и атрезия фолликула, образование желтого тела, так и при патологических (синдром гиперстимуляции яичников, образование фолликулярных кист, развитие поликистоза яичников, эндометриоза, дисфункциональных маточных кровотечений). Основным ангиогенным фактором определен сосудистый эндотелиальный фактор роста, участвующий самостоятельно и через опосредующие факторы в овариогенезе, играющий важную роль в эндотелиальной клеточной дифференцировке и развитии сосудистого рисунка, стимулирующий эндотелиальную пролиферацию, миграцию и выживание экстравазальных клеток яичника. Ангиогенная активность в яичниках находится также под контролем других ростовых факторов: фактора роста фибробластов, эпидермального фактора роста, фактора роста тромбоцитов, инсулино-подобного фактора роста-1, а также цитокинов (таких как тумор-некротический фактор, интерлейкины, компоненты экстрацеллюлярного матрикса (ламинин, фибронектин) и их рецепторы (интегрины), матричные металлопро регуляторы, протеазы (плазминоген, активаторы урокиназы и урокиназы тканевого типа)). Аберрантная продукция этих ангиогенных факторов может быть причиной сосудистой дисфункции и развития овариальных расстройств. Представлены различные точки зрения на проблему васкулогенеза в женской гонаде, а также направления для дальнейших фундаментальных и практических исследований.
Об авторе
В. Г. Зенкина
Тихоокеанский государственный медицинский университет 690950, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2
Россия
Россия
канд. мед. наук, доцент, зав. кафедрой биологии, ботаники и экологии Тихоокеанского государственного медицинского университета, г. Владивосток
Список литературы
1. Волкова О.В., Бичерова И.А., Демяшкин Г.А. Факторы роста и их значение в процессах репродукции // Фундаментальные исследования. 2006; 5: 82−83.
2. Çенкина В.Г., Каредина В.С. Действие пищевых добавок «Тингол−1» и «Тингол-2» на яичники крыс // Тихоокеан. мед. журн. 2003; 4: 35−36.
3. Çенкина В.Г., Солодкова О.А. Овариальный резерв женщин г. Владивостока в позднем репродуктивном периоде // Фундамент. исслед. 2014; 4: 76–80.
4. Galeati G., Spinaci M., Govoni N. Stimulatory effects of fasting on vascular endothelial growth factor (VEGF) production by growing pig ovarian follicles // Reproduction. 2003; 5: 647–652.
5. Çенкина В.Г. Морфологические особенности яичников плодов и новорожденных // Фундаментальные исследования. 2014; 7 (3): 504–508.
6. Каргалова Е.П., Кацук Л.Н., Ларюшкина А.В. Гистохимическая характеристика капилляров яичников крыс при введении женских половых гормонов // Тихоокеан. мед. журн. 2007; 4: 53–55.
7. Каргалова Е.П., Кацук Л.Н., Ларюшкина А.В. Функциональная морфология капиллярного русла яичников после введения женских половых гормонов // Ангиология и сосудистая хирургия. 2012; 18: 22.
8. Бурлев В.А., Çайдиева Ç.С., Ильясова Н.А. Регуляция ангиогенеза гестационного периода (обзор литературы) // Пробл. репрод. 2008; 3: 18–22.
9. Бурлев В.А. Воспалительный стресс: системный ангиогенез, белки острой фазы и продукты деструкции тканей у больных хроническим рецидивирующим сальпингоофоритом // Пробл. репрод. 2011; 5: 25–32.
10. Çенкина В.Г. Çначение апоптоза в яичниках при развитии некоторых заболеваний репродуктивной системы // Фундамент. исслед. 2011; 6: 227–230.
11. Fátima L.A., Evangelista M.C., Silva R.S. et al. FSH up-regulates angiogenic factors in luteal cells of buffaloes // Domest. Anim. Endocrinol. 2013; 45 (4): 224–237.
12. Bukovsky A. Sex steroid-mediated reprogramming of vascular smooth muscle cells to stem cells and neurons: possible utilization of sex steroid combinations for regenerative treatment without utilization of in vitro developed stem cells // Cell Cycle. 2009; 8 (24): 4079–4084.
13. Abramovich D., Irusta G., Bas D. et al. Angiopoietins/TIE2 system and VEGF are involved in ovarian function in a DHEA rat model of polycystic ovary syndrome // Endocrinology. 2012; 153 (7): 3446–3456.
14. Стрижаков А.Н., Пирогова М.Н., Шахламова М.Н. и др. Роль сосудисто- ýндотелиального фактора роста и его рецепторов в овариальном ангиогенезе и апоплексии яичника // Вопр. гинекол., акушерства и перинатол. 2014; 5: 40–47.
15. Brown H.M., Russell D.L. Blood and lymphatic vasculature in the ovary: development, function and disease // Hum. Reprod. Update. 2014; 20 (1): 29–39.
16. Delli Carpini J., Karam A.K., Montgomery L. Vascular endothelial growth factor and its relationship to the prognosis and treatment of breast, ovarian, and cervical cancer // Angiogenesis. 2010; 13 (1): 43–58.
17. Herr D., Bekes I., Wulff C. Regulation of endothelial permeability in the primate corpora lutea: implications for ovarian hyperstimulation syndrome // Reproduction. 2015; 149 (2): 71–79.
18. Abdel-Ghani M.A., Shimizu T., Suzuki H. Expression pattern of vascular endothelial growth factor in canine folliculogenesis and its effect on the growth and development of follicles after ovarian organ culture // Reprod. Domest. Anim. 2014; 49 (5): 734–743.
19. Chouhan V.S., Dangi S.S., Gupta M. et al. Stimulatory effect of vascular endothelial growth factor on progesterone production and survivability of cultured bubaline luteal cells // Anim. Reprod. Sci. 2014; 148 (3–4): 251–259.
20. Hazzard T.M, Stouffer R.L. Angiogenesis in ovarian follicular and luteal development // Baillieres Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2000; 14 (6): 883–900.
21. Kuwabara Y., Katayama A., Tomiyama R. et al. Gonadotropin regulation and role of ovarian osteopontin in the periovulatory period // J. Endocrinol. 2015; 224 (1): 49–59.
22. Rico C., Dodelet-Devillers A., Paquet M. et al. HIF1 activity in granulosa cells is required for FSH-regulated Vegfa expression and follicle survival in mice // Biol. Reprod. 2014; 90 (6): 135.
23. Uniyal S., Panda R.P., Chouhan V.S. et al. Expression and localization of insulin-like growth factor system in corpus luteum during different stages of estrous cycle in water buffaloes (Bubalus bubalis) and the effect of insulin-like growth factor I on production of vascular endothelial growth factor and progesterone in luteal cells cultured in vitro // Theriogenology. 2015; 83 (1): 58–77.
24. Wang J., Shi M., Xi Y. et al. Recombinant human vascular endothelial growth factor receptor 1 effectively inhibits angiogenesis in vivo // Mol. Med. Rep. 2015; 11 (5): 3432– 3438.
25. Zhu G., Chen X., Mao Y. et al. Characterization of annexin A2 in chicken follicle development: Evidence for its involvement in angiogenesis // Anim. Reprod. Sci. 2015; 161: 104–111.
26. Coppola F., Ferrari B., Barusi L. et al. Follicular fluid levels of vascular endothelial growth factor and early corpus luteum function during assisted reproductive technology cycles // J. Exp. Clin. Assist. Reprod. 2005; 30: 2–13.
27. Gutman G., Barak V., Maslovitz S. et al. Regulation of vascular endothelial growth factor- A and its soluble receptor sFlt-1 by luteinizing hormone in vivo: implication for ovarian follicle angiogenesis // Fertil. Steril. 2008; 89 (4): 922–926.
28. Павлович С.В., Бурлев В.А. Сосудисто-ýндотелиальный фактор роста в патогенезе синдрома гиперстимуляции яичников // Акушерство и гинекология. 2004; 2: 11–13.
29. Abir R., Ao A., Zhang X.Y. et al. Vascular endothelial growth factor A and its two receptors in human preantral follicles from fetuses, girls, and women // Fertil. Steril. 2010; 93 (7): 2337–2384.
30. Chuderland D., Ben-Ami I., Bar-Joseph H., Shalgi R. Role of pigment epithelium-derived factor in the reproductive system // Reproduction. 2014; 148 (4): 53–61.
31. Meidan R., Klipper E., Zalman Y., Yalu R. The role of hypoxia-induced genes in ovarian angiogenesis // Reprod. Fertil. Dev. 2013; 25 (2): 343–350.
32. Ferrara N. Vascular endothelial growth factor and the regulation of angiogenesis // Recent Prog. Horm. Res. 2000; 55: 15–35.
33. Wiles J.R., Katchko R.A., Benavides E.A. et al. The effect of leptin on luteal angiogenic factors during the luteal phase of the estrous cycle in goats // Anim. Reprod. Sci. 2014; 148 (3–4): 121–129.
34. Mutlag A.M., Wang X., Yang Z. et al. Study on matrix metalloproteinase 1 and 2 gene expression and NO in dairy cows with ovarian cysts // Anim. Reprod. Sci. 2015; 152: 1–7.
35. McFee R.M., Cupp A.S. Vascular contributions to early ovarian development: potential roles of VEGFA isoforms // Reprod. Fertil. Dev. 2013; 25 (2): 333–342.
36. Sidibé A., Polena H., Pernet-Gallay K. et al. VE-cadherin Y685F knock-in mouse is sensitive to vascular permeability in recurrent angiogenic organs // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2014; 307 (3): 455–463.
37. Bellian J., Thuillez C., Joannides R. Contribution of endothelium-derived hyperpolarizing factors to the regulation of vascular tone in humans // Fundam. Clin. Pharmacol. 2008; 22: 363–377.
38. Chuderland D., Ben-Ami I., Kaplan-Kraicer R. et al. Hormonal regulation of pigment epithelium-derived factor (PEDF) in granulosa cells // Mol. Hum. Reprod. 2013; 19 (2): 72– 81.
39. Luo H., Li B., Li Z. et al. Chaetoglobosin K inhibits tumor angiogenesis through downregulation of vascular epithelial growth factor-binding hypoxia-inducible factor 1α // Anticancer Drugs. 2013; 24 (7): 715–724.
40. Tamanini C., De Ambrogi M. Angiogenesis in developing follicle and corpus luteum // Reprod. Domest. Anim. 2004; 39 (4): 206–216.
41. Vera C., Tapia V., Vega M., Romero C. Role of nerve growth factor and its TRKA receptor in normal ovarian and epithelial ovarian cancer angiogenesis // J. Ovarian Res. 2014; 10: 7– 82.
42. Stanek M.B., Borman S.M., Molskness T.A. et al. Insulin and insulin-like growth factor stimulation of vascular endothelial growth factor production by luteinized granulosa cells: comparison between polycystic ovarian syndrome (PCOS) and non-PCOS women // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2007; 92 (7): 2726–2733.
43. Zhang Z., Pang X., Tang Z. et al. Overexpression of hypoxia-inducible factor prolyl hydoxylase-2 attenuates hypoxia-induced vascular endothelial growth factor expression in luteal cells // Mol. Med. Rep. 2015; 12 (3): 3809–3814.
44. Clapp C., Thebault S., Macotela Y. et al. Regulation of blood vessels by prolactin and vasoinhibins // Adv. Exp. Med. Biol. 2015; 846: 83–95.
45. Artini P.G., Cristello F., Monti M. et al. Vascular endothelial growth factor and its soluble receptor in ovarian pathology // Gynecol. Endocrinol. 2005; 21 (1): 50–56.
46. Davis J.S., Rueda B.R., Spanel-Borowski K. Microvascular endothelial cells of the corpus luteum // Reprod. Biol. Endocrinol. 2003; 10: 89.
47. Herr D., Fraser H.M., Konrad R. et al. Human chorionic gonadotropin controls luteal vascular permeability via vascular endothelial growth factor by down-regulation of a cascade of adhesion proteins // Fertil. Steril. 2013; 99 (6): 1749–1758.
48. Kata Osz, Michelle Ross, Jim Petrik. The thrombospondin-1 receptor CD36 is an important mediator of ovarian angiogenesis and folliculogenesis // Reprod. Biol. Endocrinol. 2014; 14: 12–21.
49. Shirasuna K., Kobayashi A., Nitta A. et al. Possible action of vasohibin-1 as an inhibitor in the regulation of vascularization of the bovine corpus luteum // Reproduction. 2012; 143 (4): 491–500.
50. Duncan W.C., Nio-Kobayashi J. Targeting angiogenesis in the pathological ovary // Reprod. Fertil. Dev. 2013; 25 (2): 362–371.
Рецензия
Для цитирования:
Зенкина В.Г. Факторы ангиогенеза при развитии физиологических и патологических процессов женской гонады. Бюллетень сибирской медицины. 2016;15(4):111-119. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2016-4-111-119
For citation:
Zenkina V.G. Factors of angiogenesis in the development of physiological and pathological processes of the female gonads. Bulletin of Siberian Medicine. 2016;15(4):111-119. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2016-4-111-119
Просмотров:
1342
Послать статью по эл. почте 