Морфология экзоорбитальных слезных желез беспородных белых крыс при высокоинтенсивном световом воздействии

Цель: изучить морфологические изменения экзоорбитальных слезных желез при экспериментальном воздействии на орган зрения высокоинтенсивного света.

Материал и методы. Белых беспородных крыс-самцов (n = 40) подвергали непрерывному воздействию света интенсивностью 3 500 лк в течение 1 сут, 7, 14 и 30 сут, контрольная группа (n = 10) содержалась в условиях естественного освещения (20 лк) в течение 1–30 сут. Экзоорбитальные слезные железы фиксировали в формалине, заливали в парафин, окрашивали гематоксилином и эозином. При помощи окулярной вставки Автандилова подсчитывали удельные объемы выводных протоков, эпителия, стромы и сосудов экзоорбитальной слезной железы, определяли эпителио-стромальное соотношение. Анализ данных осуществляли методами описательной статистики с вычислением медианы (Ме) и интерквартильного интервала (Q1 –Q3 ). Для оценки различий использовали непараметрический критерий Манна – Уитни.

Результаты. Через 1 сут в ответ на высокоинтенсивное световое воздействие возникало рефлекторное усиление синтетической функции экзоорбитальной слезной железы. На 7-е сут появлялись первые признаки нарушения функционирования с развитием гидропической дистрофии в лакримацитах. К 14-м сут развивались фиброзные изменения, в железистой паренхиме появлялись участки гардеризации. На 30-е сут наблюдался пикноз ядер отдельных лакримацитов, накопление липофусцина в цитоплазме.

Заключение. Полученные данные позволяют в динамике оценить реактивные компенсаторно-приспособительные реакции слезной железы на высокоинтенсивное световое воздействие от момента начала их развития до появления первых признаков декомпенсации. 

1. Venable J., Grafflin A. Gross anatomy of the orbital glands in the albino rat // J. Mammalogy. 1940; 21 (1): 66–71.

2. Conrady C.D., Joos Z.P., Patel B.C.K. Review: The lacrimal gland and its role in dry eye // Journal of Ophthalmology. 2016: 7542929. DOI 10.1155/2016/7542929.

3. Rocha E.M., Alves M., Rios J.D., Dartt D.A. The aging lacrimal gland: changes in structure and function // The Ocular Surface. 2008; 6 (4): 162–174.

4. Рыжов А.И., Логвинов С.В., Ягницына А.А. Морфология слезного аппарата белых крыс при воздействии ультрафиолетовых лучей. Томск, 1984. 8 с. Рукопись предоставлена Томским мед. ин-том. Деп. в ВИНИТИ 14.06.1984. ¹ 4422-84 Деп.

5. Логвинов С.В. Морфология слезного аппарата белой крысы при воздействии микроволн. Томск, 1984. 9 с. Рукопись предоставлена Томским мед. ин-том. Деп. в ВИНИТИ 15.03.1984. № 1455-84 Деп.

6. Логвинов С.В. Морфология слезной экзоорбитальной железы после дробного воздействия рентгеновыми лучами // Вопр. теорет. и клинич. медицины. Томский мед. институт. 1984; 10: 78–81.

7. Li J., Shan Z., Ou G. et al. Structural and functional characteristics of irradiation damage to parotid glands in the miniature pig // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2005; 62: 1510–1516.

8. Muhvic-Urek M., Bralic M., Curic S. et al. Imbalance between apoptosis and proliferation causes late radiation damage of salivary gland in mouse // Physiol. Res. 2006; 55: 89–95.

9. Nakamura S., Kinoshita S., Yokoi N. et al. Lacrimal hypofunction as a new mechanism of dry eye in visual display terminal users. Chakravarti S., ed.PLoS ONE. 2010; 5 (6): e11119.

10. Hakim S.G., Schroder C., Geerling G. et al. Early and late immunohistochemical and ultrastructural changes associated with functional impairment of the lachrymal gland following external beam radiation // International Journal of Experimental Pathology. 2006; 87 (1): 65–71.

11. Seo Y., Ji Y.W., Lee S.M. et al. Activation of HIF-1α (hypoxia inducible factor-1α) prevents dry eye-induced acinar cell death in the lacrimal gland // Cell Death & Disease. 2014; 5(6): e1309.

12. Бродский В.Я., Урываева И.В. Клеточная полиплоидия. Пролиферация и дифференцировка. М.: Наука, 1981: 260.

13. Ríos J.D., Horikawa Y., Chen L.-L. et al. Age-dependent alterations in mouse exorbital lacrimal gland structure, innervation and secretory response // Experimental eye research. 2005; 80 (4): 477–491. DOI 10.1016/j.exer.2004.10.012.

14. El-Fadaly A.B., El-Shaarawy E.A.A., Rizk A.A. et al. Age-related alterations in the lacrimal gland of adult albino rat: A light and electron microscopic study // Ann. Anat. 2014; 196 (5): 336–351. DOI 10.1016/j.aanat.2014.06.005.

15. Porta E.A. Dietary factors in lipofuscinogenesis and ceroidogenesis. // Arch. Gerontol. Geriatr. 2002; 34: 319–327.

16. Benson W.R. Acceleration of aging changes in the exorbital lacrimal gland of the female rat // The American Journal of Pathology. 1964; 45 (4): 587–597.

17. Ferrara D., Monteforte R., Baccari G. et. al. Androgen and estrogen receptors expression in the rat exorbital lacrimal gland in relation to “harderianization” // Journal of experimental zoology. Part A, Comparative experimental biology. 2004; 301 (4): 297–306.