Моделирование гипертрофии больших слюнных желез у неполовозрелых крыс: морфометрическая и гистохимическая характеристика эпителиоцитов

Цель исследования. Оценить морфофункциональное состояние эпителиальных клеток ацинусов и протоков больших слюнных желез неполовозрелых крыс при гипертрофии, вызванной многократной ампутацией резцов.
Материал и методы. Эксперимент проведен на неполовозрелых (20 сут) самцах белых крыс, разделенных на три группы: интактная, контрольная и группа крыс, подвергшихся многократной ампутации резцов. Выведение животных из эксперимента осуществляли на 2-ю, 3-, 4-, 6-, 8-, 10- и 12-ю нед после первой ампутации резцов. Морфофункциональное состояние больших слюнных желез крыс оценивали гистологически (гематоксилин и эозин), гистохимически (альциановый синий, ШИК-реакция, по Браше) и морфометрически (площадь ацинусов, удельный объем внутридольковых протоков).
Результаты. При многократной ампутации резцов у неполовозрелых самцов крыс на 2–4-й нед эксперимента наблюдались увеличение площади ацинусов и снижение удельного объема внутридольковыхпротоков поднижнечелюстных желез. В клетках концевых отделов поднижнечелюстных желез на 3-й нед эксперимента пиронинофилия цитоплазмы менее, а интенсивность ШИК-реакции – более выражена, чем у интактных животных. При многократной ампутации резцов у неполовозрелых крыс морфофункциональных изменений эпителиоцитов околоушных и подъязычных желез не наблюдалось.
Заключение. Многократная ампутация резцов у неполовозрелых самцов крыс в ранние сроки эксперимента (2–4-я нед) приводит к гипертрофии клеток ацинусов поднижнечелюстных желез, накоплению в них гликопротеинов и ослаблению синтеза РНК. Гипертрофия клеток ацинусов сопровождается замедлением развития эпителиоцитов гранулярных извитых трубок, которые являются местом синтеза и секреции эндокринных биологически активных факторов поднижнечелюстных желез.

1. Бабаева А.Г., Шубникова Е.А. Структура, функция и адаптивный рост слюнных желез. М.: МГУ, 1979: 192.

2. Гуцол А.А., Кондратьев Б.Ю. Практическая морфометрия органов и тканей: для врачей патологоанатомов. Томск: Издательство Томского университета, 1988: 136.

3. Саврова О.Б. Цитологический анализ секреторного ýпителия подчелюстных слюнных желез крысы, гипертрофированных под влиянием повторных ампутаций нижних резцов // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1976; (3): 376–377.

4. Kofoed J.A., Houssay A.B., Curbelo H.M., Tocci A.A. Effects of incisor amputations upon the glycosaminoglycans in salivary glands in the rat // Аrch. Oral Biol. 1971; 16: 87–93.

5. Handelman C.S., Wells H. Morphological and histochemical studies of experimentally enlarged and atrophied salivary glands of rats // Am. J. Anat. 1963; 112: 65–79.

6. Berkman M.D., Kronman J.H. A histochemical study of the effects of castration and testosterone administration on the major salivary glands of swiss mice // Acta Anat. (Basel). 1970; 76 (2): 200–219.

7. Karn R.C., Chung A.G., Laukaitis C.M. Shared and unique proteins in human, mouse and rat saliva proteomes: footprints of functional adaptation // Proteomes. 2013; 1 (3): 275–289.

8. Levine M. Susceptibility to dental caries and the salivary proline-rich proteins // Int. J. Dent. 2011; 2011: 1–13.

9. Nashida T., Sato R., Imai A., Shimomura H. Gene expression profiles of the three major salivary glands in rats // Biomed. Res. 2010; 31 (6): 387–399.

10. Wu J.F., Zhang J., Xue G., Zhang H.Q. Expression and ocalization of trefoil factor family genes in rat submandibular glands // Biotech. Histochem. 2014; 89 (6): 424–432.

11. Gresik E.W. The granular convoluted tubule (GCT) cell of rodent submandibular glands // Microsc. Res. Tech. 1994; 27 (1): 1–24.

12. Adthapanyawanich K., Kumchantuek T., Nakata H., Yamamoto M., Wakayama T., Nishiuchi T., Iseki S. Morphology and gene expression profile of the submandibular gland of androgen-receptor-deficient mice // Arch. Oral Biol. 2015; 60 (2): 320–332.