СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ ДЕЙСТВИЯ КОАГУЛЯЦИИ «ХОЛОДНОЙ ПЛАЗМОЙ» И НАЛОЖЕНИЯ ГЕМОСТАТИЧЕСКИХ ШВОВ НА СТРУКТУРУ ПЕЧЕНИ В РАННИЕ СРОКИ ПОСЛЕ АТИПИЧНОЙ РЕЗЕКЦИИ

С целью сравнительного анализа морфофункциональных изменений печени, возникающих на ранние сроки после атипичной резекции печени с последующим гемостазом «холодной плазмой» и наложением гемостатических швов, выполнен эксперимент на 45 лабораторных крысах-самцах. Выделено три группы исследования: 5 интактных животных (контроль) и по 5 животных в группе после атипичной резекции печени и наложения гемостатических швов и в группе после атипичной резекции печени и коагуляции «холодной плазмой». Взятие материала для исследования производилось на 3-и, 7-е, 14-е, 30-е сут после оперативного вмешательства. Оперативное вмешательство – резекция левой доли печени, наложение гемостатических швов либо коагуляция холодной плазмой. Выполняли биохимический контроль крови (глюкоза, АЛТ, АСТ, тимоловая проба, билирубин общий и прямой, щелочная фосфатаза, общий белок, мочевина, α-амилаза, С-реактивный белок, фибриноген, АЧТВ, протромбиновое время, МНО), а также оценивали морфологические и морфометрические параметры в биоптатах печени. Анализ биохимических маркеров крови выявил увеличение в экспериментальных группах относительно группы контроля на ранних сроках таких показателей, как АСТ, α-амилаза, щелочная фосфатаза, фибриноген, тимоловая проба. К 30-м сут сохраняется незначительное повышение уровня α-амилазы, при этом в группе коагуляции плазмой этот показатель ниже, чем в группе наложения гемостатических швов. Морфологический анализ печени показал, что удельный объем гепатоцитов с признаками дистрофии, с некротическими изменениями, объемная плотность соединительной ткани (мм3/мм3), а также плотность клеточного инфильтрата в 1 мм2 в обеих экспериментальных группах на 7-е, 14-е сут увеличиваются, а затем постепенно снижаются к 30-м сут. Удельный объем двуядерных гепатоцитов (мм3/мм3) в опытной группе на ранние сроки снижается, а к 30-м сут, напротив увеличивается. При этом деструктивные и воспалительные изменения, обнаруженные в печени экспериментальных животных на всех сроках исследования, при воздействии «холодной плазмой» более низкие, чем в группе наложения гемостатических швов. Установлено, что повреждающее воздействие на печеночные клетки, вызываемое «холодной плазмой» при остановке кровотечений из печени, значительно ниже, чем эффекты, формирующиеся при наложении гемостатических швов.

гемостатический шов, «холодная плазма», коагулятор, кровотечение печени, гемостаз паренхиматозных кровотечений

1. Альперович Б.И. Хирургия печени. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2010. 352 c.

2. Альперович Б.И., Соловьев М.М. Неотложная хирургия живота. Томск: Курсив, 2002. 222 c.

3. Асоян Г.А., Белоусов О.С. Местный гемостаз в хирургической практике // Вестн. хирургии им. И.И. Грекова. 1984. Т. 132, № 4. С. 14–19.

4. Бородин О.Ю., Семичев Е.В., Бушланов П.С. Экспериментальная хирургия паренхиматозных органов (обзор литературы) // Рус. мед. журн. 2012. № 36. С. 1743–1747.

5. Бородин О.Ю., Семичев Е.В. Анализ контрастирующего эффекта при динамической магнитнорезонансной томографии с примовистом у крыс, оперированных на печени с применением классического шва // Мед. визуализация. 2012. № 4. С. 118–125.

6. Виноградова О.И., Телицкий С.Ю., Щукина Е.В, Алейник А.Н. Применение неравновесной плазмы в медицине и биологии // Научная сессия МИФИ-2009: аннотации докладов. М., 2009. С. 128.

7. Попов В.А. Гемостаз и герметизация швов (операции на внутренних органах). М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. 320 с.

8. Чарышкин А.Л., Гафиуллов М.Р., Демин В.П. Оценка результатов ушивания ран печени и селезенки при закрытых травмах органов брюшной полости // Вестн. эксперим. и клинич. хирургии. 2012. Т. 5, № 3. С. 593–595.

9. Ahmed N., Vernick J.J. Management of liver trauma in adults // J. Emerg. Trauma Shock. 2011. V. 4 (1). P. 114–119.

10. Alkozai E.M., Lisman T., Porte R.J. Bleeding in liver surgery: prevention and treatment // Clin. Liver Dis. 2009. V. 13 (1). P. 145–154.

11. Carus T., Rackebrandt K. Collateral tissue damage by several types of coagulation (monopolar, bipolar, cold plasma and ultrasonic) in a minimally invasive, perfused liver model. // International Scholarly Research Network ISRN Surg. 2011. V. 2011. P. 1.

12. Fridman G., Peddinghaus M., Ayan H., Fridman A., Balasubramanian M., Gutsol A., Brooks A. Blood Coagula-tion and Living Tissue Sterilization by Floa-ting-Electrode Dielectric Barrier Discharge in Air // Plasma Chem. Plasma Process. 2006. V. 26. P. 425–442.

13. Fridman G., Peddinghaus M., Fridman A., Balasubramanian M., Gutsol A., Friedman G. Use of non-thermal atmospheric pressure plasma discharge for coagula-tion and sterilization of surface wounds // 17th International Symposium on plasma chemistry. Toronto, 2005. P. 1–2.

14. Kalghatgi S.U., Fridman G., Cooper M., Nagaraj G., Peddinghaus M., Balasubramanian M., Vasilets V.N., Gutsol A.F., Fridman A., Friedman G. Mechanism of Blood Coagulation by Non-Thermal Atmospheric Pressure Dielectric Barrier Discharge // Plasma Science. 2007. ICOPS 2007. IEEE 34th International Conference. 2007. P. 674.

15. Kalghatgi S.U., Kelly C.M., Cerchar E., Torabi B., Ale-kseev O., Fridman A., Friedman G., Azizkhan-Clifford J. Ef-fects of Non-Thermal Plasma on Mammalian Cells. PLoS ONE. 2011; 6(1): е16217. doi: 10.1371/jour-nal.pone.0016270. PMID: 21283714.