Моноциты, β-лимфоциты и дендритные клетки при риновирусиндуцированном обострении бронхиальной астмы
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-1-228-236
Аннотация
Цель. Цель работы заключалась в определении количества различных популяций клеток периферической крови у пациентов с бронхиальной астмой (БА) и здоровых индивидуумов до и во время экспериментальной риновирусной инфекции.
Материалы и методы. Экспериментальная инфекция риновирусом 16-го типа (РВ16) была индуцирована у добровольцев, не имеющих антител к РВ16. Мононуклеары периферической крови от 8 пациентов с легкой персистирующей БА (LPA), 12 с персистирующей БА средней тяжести (PAST) и 6 здоровых добровольцев (норма), полученные за 14 сут до заражения и на 4-е сут после заражения, исследовались методом проточной цитометрии. B-клетки идентифицировали как CD19+. Моноциты классифицировали как CD19–, MHCII, CD14high. Клетки, охарактеризованные как MHCII, CD14neg-low, далее классифицировали как плазмоцитоидные (pDC) (CD123+) и миелоидные (mDC) дендритные клетки (CD11chigh).
Результаты. Не выявлено различий между разными группами добровольцев по содержанию моноцитов, mDC и pDC в образцах крови до инфицирования. Однако мы обнаружили повышение уровня B-клеток в крови пациентов с БА по сравнению со здоровыми добровольцами (p < 0,05). Также на 4-е сут после заражения РВ16 мы выявили снижение количества циркулирующих pDC в крови пациентов с БА (LPA и PAST) по сравнению с исходным уровнем (p < 0,05).
Заключение. Полученные данные свидетельствуют о повышенном миграционным потенциале циркулирующих pDC при обострении вирус-индуцированных осложнений БА. Отсутствие изменений в количестве mDC во время инфекции мы объясняем тем, что разные популяции DC мигрируют к участкам аллергического воспаления в разные временные интервалы.
При поддержке: Грант Российского научного фонда (проект № 16-14-10188)
Об авторах
Р. М. Хаитов
ГНЦ Институт иммунологии
Россия
Россия
Хаитов Рахим Мусаевич, доктор медицинских наук, профессор, академик РАН, научный руководитель Института иммунологии
115478, г. Москва, Каширское шоссе, 24
А. А. Никонова
ГНЦ Институт иммунологии;
Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток (НИИВС) им. И.И. Мечникова
Россия
Россия
Никонова Александра Александровна, кандидат биологических наук, заведующий лабораторией, НИИВС им. И.И. Мечникова
115478, г. Москва, Каширское шоссе, 24,
105064, г. Москва, Малый Казенный пер., 5а
М. Р. Хаитов
ГНЦ Институт иммунологии
Россия
Россия
Хаитов Муса Рахимович, доктор медицинских наук, профессор, член-корреспондент РАН, директор Института иммунологии
115478, г. Москва, Каширское шоссе, 24
Список литературы
1. Rissoan M.C., Soumelis V., Kadowaki N., Grouard G., Briere F., de Waal Malefyt R., Liu Y.J. Reciprocal control of T helper cell and dendritic cell differentiation. Science. 1999; 283 (5405): 1183–1186. DOI: 10.1126/science.283.5405.1183.
2. O’Doherty U., Peng M., Gezelter S., Swiggard W.J., Betjes M., Bhardwaj N., Steinman R.M. Human blood contains two subsets of dendritic cells, one immunologically mature and the other immature. Immunology. 1994; 82 (3): 487–493.
3. Pashenkov M., Huang Y.M., Kostulas V., Haglund M., Soderstrom M., Link H. Two subsets of dendritic cells are present in human cerebrospinal fluid. Brain. 2001; 124 (Pt. 3): 480–492. DOI: 10.1093/brain/124.3.480.
4. Summers K.L., Hock B.D., McKenzie J.L., Hart D.N. Phenotypic characterization of five dendritic cell subsets in human tonsils. Am. J. Pathol. 2001; 159 (1): 285–295. DOI: 10.1016/S0002-9440(10)61694-X.
5. Farkas L., Beiske K., Lund-Johansen F., Brandtzaeg P., Jahnsen F.L. Plasmacytoid dendritic cells (natural interferon- alpha/beta-producing cells) accumulate in cutaneous lupus erythematosus lesions. Am. J. Pathol. 2001; 159 (1): 237–243. DOI: 10.1016/s0002-9440(10)61689-6.
6. Zou W., Machelon V., Coulomb-L’Hermin A., Borvak J., Nome F., Isaeva T., Wei S., Krzysiek R., Durand-Gasselin I., Gordon A., Pustilnik T., Curiel D.T., Galanaud P., Capron F., Emilie D., Curiel T.J. Stromal-derived factor-1 in human tumors recruits and alters the function of plasmacytoid precursor dendritic cells. Nat. Med. 2001; 7 (12): 1339–1346. DOI: 10.1038/nm1201-1339.
7. Wollenberg A., Wagner M., Gunther S., Towarowski A., Tuma E., Moderer M., Rothenfusser S., Wetzel S., Endres S., Hartmannn H. Plasmacytoid dendritic cells: a new cutaneous dendritic cell subset with distinct role in inflammatory skin diseases. J. Invest. Dermatol. 2002; 119 (5): 1096–1102. DOI: 10.1046/j.1523-1747.2002.19515.x.
8. Liu Y.J. IPC: professional type 1 interferon-producing cells and plasmacytoid dendritic cell precursors. Ann. Rev. Immunol. 2005; 23: 275–306. DOI: 10.1146/annurev.immunol.23.021704.115633.
9. Gill M.A., Long K., Kwon T., Muniz L., Mejias A., Connolly J., Roy L., Banchereau J., Ramilo O. Differential recruitment of dendritic cells and monocytes to respiratory mucosal sites in children with influenza virus or respiratory syncytial virus infection. J. Infect. Dis. 2008; 198 (11): 1667–1676. DOI: 10.1086/593018.
10. Grayson M.H., Ramos M.S., Rohlfing M.M., Kitchens R., Wang H.D., Gould A., Agapov E., Holtzman M.J. Controls for lung dendritic cell maturation and migration during respiratory viral infection. J. Immunol. 2007; 179 (3): 1438–1448. DOI: 10.4049/jimmunol.179.3.1438.
11. Gern J.E., Rosenthal L.A., Sorkness R.L., Lemanske R.F., Jr. Effects of viral respiratory infections on lung development and childhood asthma. J. Allergy Clin. Immunol. 2005; 115 (4): 668–674. DOI: 10.1016/j.jaci.2005.01.058.
12. Gill M.A. The role of dendritic cells in asthma. J. Allergy Clin. Immunol. 2012; 129 (4): 889–901. DOI: 10.1016/j.jaci.2012.02.028.
13. Autissier P., Soulas C., Burdo T.H., Williams K.C. Evaluation of a 12-color flow cytometry panel to study lymphocyte, monocyte, and dendritic cell subsets in humans. Cytometry A. [Evaluation Studies Research Support, N.I.H., Extramural]. 2010; 77 (5): 410–419. DOI: 10.1002/cyto.a.20859.
14. Blimkie D., Fortuno E.S., Thommai F., Xu L., Fernandes E., Crabtree J., Rein-Weston A., Jansen K., Brinkman R. R., Kollmann T. R. Identification of B cells through negative gating-An example of the MIFlowCyt standard applied. Cytometry A. [Research Support, Non-U.S. Gov’t]. 2010; 77 (6): 546–551. DOI: 10.1002/cyto.a.20862.
15. Noh J., Noh G. Allergen-specific responses of CD19(high) and CD19(low) B Cells in Non-IgE-mediated food allergy of late eczematous reactions in atopic dermatitis: presence of IL-17- and IL-32-producing regulatory B cells (Br17 & Br32). Inflamm. Allergy Drug Targets. 2012; 11 (4): 320–329. DOI: 10.2174/187152812800959022.
16. Heeringa J.J., Rijvers L., Arends N.J., Driessen G.J., Pasmans S.G., van Dongen J.J.M, de Jongste J.C., van Zelm M. C. IgE-expressing memory B cells and plasmablasts are increased in blood of children with asthma, food allergy, and atopic dermatitis. Allergy. 2018; 73 (6): 1331– 1336. DOI: 10.1111/all.13421.
17. Luo J., Guo H., Liu Z., Peng T, Hu X, Han M, Yang X., Zhou H., Li H. Analysis of Peripheral B Cell Subsets in Patients With Allergic Rhinitis. Allergy Asthma Immunol. Res. 2018; May; 10 (3): 236–243. DOI: 10.4168/aair.2018.10.3.236.
18. Silver E., Yin-DeClue H., Schechtman K.B., Grayson M.H., Bacharier L.B., Castro M. Lower levels of plasmacytoid dendritic cells in peripheral blood are associated with a diagnosis of asthma 6 yr after severe respiratory syncytial virus bronchiolitis. Pediatr. Allergy Immunol. 2009; 20 (5): 471–476. DOI: 10.1111/j.1399-3038.2008.00818.x.
Рецензия
Для цитирования:
Хаитов Р.М., Никонова А.А., Хаитов М.Р. Моноциты, β-лимфоциты и дендритные клетки при риновирусиндуцированном обострении бронхиальной астмы. Бюллетень сибирской медицины. 2019;18(1):228-236. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-1-228-236
For citation:
Khaitov R.M., Nikonova A.A., Khaitov M.R. Monocytes, B-cells and dendritic cells during rhinovirus-induced asthma exacerbation. Bulletin of Siberian Medicine. 2019;18(1):228-236. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-1-228-236
Просмотров: 941
Послать статью по эл. почте 