Роль μ-опиоидных рецепторов в регуляции желчеотделительной функции печени
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2006-2-90-95
Аннотация
В острых опытах на белых крысах изучено влияние периферического и центрального введения DAGO (агонист μ-опиоидных рецепторов) на скорость секреции и состав секретируемой желчи при интактной и денервированной печени. Показано, что DAGO в значительной степени изменяет состав желчи при обоих способах введения, а также, что эффекты периферической и центральной стимуляции опиоидных рецепторов DAGO на желчеотделение носят разнонаправленный характер. Наличие интактной иннервации печени является необходимым условием проявления эффекта центральной стимуляции опиоидных рецепторов DAGO на желчеотделение.
Ключевые слова
опиоидные пептиды,
DAGO,
налоксон,
секреция желчи,
opioid peptides,
DAGO,
naloxone,
secretion of bile
Об авторах
М. А. Медведев
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
И. В. Рудин
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
А. Ф. Гараева
Сибирский государственный медицинский университет
Россия
Россия
Список литературы
1. Акинчиц М.А., Павловская Н.А. Модификация метода определения билирубина в сыворотке крови. // Лаб. дело. 1988. № 12. С. 727—730.
2. Ганиткевич Я.В., Карбач Я.И. Исследование желчи: биохимические и биофизические методы. Киев: Наукова думка, 1985.
3. Золоев Г.К., Боброва И.В., Хабарова Н.И., Абиссова Н.А. Некоторые механизмы участия опиоидных пептидов в регуляции углеводного обмена // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1992. Т. 113. № 3. С. 257—259.
4. Мартынова Е.Р., Медведев О.С. Влияние опиоидных пептидов на регионарную гемодинамику у бодрствующих крыс // Бюл. эксперим. биологии и медицины 1988. Т. 106. № 8. С. 136—139.
5. Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования в клинике. М.: Медицина, 1987.
6. Мирошниченко В.П., Громашевская Л.Л., Касаткина М.И., Козачек Г.А. Определение содержания желчных кислот и холестерина в желчи // Лаб. дело. 1978. № 3. С. 149—153.
7. Полонский В.М., Коробов Н.В. Противоязвенное действие и периферическая опиоидная активность продуктов деградации даларгина // Бюл. ВКНЦ АМН СССР. 1986. Т. 9. № 2. С. 83—86.
8. Полонский В.М., Ярыгин К.Н., Кривошеев О.Г. и др. Место приложения (центральное или периферическое) противоязвенного действия синтетического аналога эндогенных опиоидов даларгина в экспериментальной модели цистеаминовых дуоденальных язв у крыс // Бюл. эксперим. биологии и медицины 1987. Т. 103. № 4. С. 433—434.
9. Рудин И.В., Медведев М.А. Опиоидные пептиды модулируют секрецию основных детерминант желчетока // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1997. Т. 123. № 5. С. 498—500.
10. Bergasa N.V., Zhou J, Ravi J, Shi Q. The opioid peptide analog D-Ala2-Met-enkephalinamide decreases bile flow by a central mechanism // Peptides. 1999. V. 20. № 8. P. 979—986.
11. Borlongan C.V., Wang Y., Su T.P. Delta opioid peptide (D-Ala 2, D-Leu 5) enkephalin: linking hibernation and neuroprotection // Front. Biosci. 2004. № 9. P. 3392—3398.
12. Chaturvedi K. Opioid peptides, opioid receptors and mechanism of down regulation // Indian. J. Exp. Biol. 2003. V. 41. № 1. P. 5—13.
13. Eager K.R., Robinson B.J., Galletly D.C., Miller J.H. Endogenous opioid modulation of hypercapnic-stimulated respiration in the rat // Respir. Physiol. 1994. V. 96. № 1. P. 13—24.
14. Hashiguchi Y., Molina P.E., Dorton S. et al. Central opiate mu-receptor-mediated suppression of tissue protein synthesis // Am. J Physiol. 1997. V. 273. № 3. Pt. 2. P. R920—R927.
15. Janecka A., Fichna J., Janecki T. Opioid receptors and their ligands // Curr. Top. Med. Chem. 2004. № 1. P. 1—17.
16. Lautt W.W., Carroll A.M. Evaluation of topical phenol as a means of producing autonomic denervation of the liver // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1984. V. 62. № 7. P. 849—853.
17. Li J.P., Lee K.Y., Chang Ta-Min, Chey W.Y. MEK inhibits secretin release and pancreatic secretion: roles of secretin-releasing peptide and somatostatin // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2001. V. 280. № 5. P. G890—G896.
18. Osipov M.H., Lai J., King T. et al. Antinociceptive and nociceptive actions of opioids // J. Neurobiol. 2004. V. 61. № 1. P. 126—148.
19. Pasternak G.W. Review: pharmacological mechanisms of opioid analgesics // Clin. Neuropharmacol. 1993. V. 16. P. 1—18.
20. Pasternak G.W. Multiple opiate receptors: deja vu all over again // Neuropharmacology. 2004. V. 47. Suppl. 1. P. 312—323.
21. Paxinos G., Watson C. The rat brain in stereotaxic coordinates. N.Y., 1982.
22. Sacerdote P., Limiroli E., Gaspani L. Experimental evidence for immunomodulatory effects of opioids // Adv. Exp. Med. Biol. 2003. V. 521. P. 106—116.
23. Smith E.M. Opioid peptides in immune cells // Adv. Exp. Med. Biol. 2003. V. 521. P. 51—68.
24. Snyder S.H. Opiate receptors and beyond: 30 years of neural signaling research // Neuropharmacology. 2004. V. 47. Suppl. 1. P. 274—285.
25. Stein C. Opioid receptors on peripheral sensory neurons // Adv. Exp. Med. Biol. 2003. V. 521. P. 69—76.
26. Von Zastrow M. Opioid receptor regulation // Neuromolecular Med. 2004. V. 5. № 1. P. 51—58.
27. Wood J.D., Galligan J.J. Function of opioids in the enteric nervous system // Neurogastroenterol. Motil. 2004. V. 16. № 2. P. 17—28.
28. Yamanouchi K., Yanaga K., Okudaira S. et al. [D-Ala2, D-Leu5] enkephalin (DADLE) protects liver against ischemia-reperfusion injury in the rat // J. Surg. Res. 2003. V. 114. № 1. P. 72—77.
Рецензия
Для цитирования:
Медведев М.А., Рудин И.В., Гараева А.Ф. Роль μ-опиоидных рецепторов в регуляции желчеотделительной функции печени. Бюллетень сибирской медицины. 2006;5(2):90-95. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2006-2-90-95
For citation:
Medvedev M.A., Rudin I.V., Garayeva A.F. The role of μ-opioid receptors in the regulation of hepatic secretory function. Bulletin of Siberian Medicine. 2006;5(2):90-95. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2006-2-90-95
Просмотров:
332
Послать статью по эл. почте 