Preview

Бюллетень сибирской медицины

Расширенный поиск

Роль биомолекул в развитии и прогрессировании кальцификации сосудов при сердечно-сосудистых заболеваниях

https://doi.org/10.20538/1682-0363-2025-3-138-148

Аннотация

Сердечно-сосудистые заболевания (ССЗ) остаются наиболее актуальной проблемой в системе здравоохранения. В патогенез ССЗ вовлечены сложные взаимодействия между изменениями интима-медиа артерий и компонентами крови (накопление липидов, сложных углеводов, фиброзной ткани, кальцификация и др.). В развитии и прогрессировании кальцификации коронарных артерий огромную роль играют различные биомолекулы, где в качестве ингибиторов кальцификации чаще всего выступают остеопонтин, остеопротегерин, склеростин, фетуин-А, неорганический пирофосфат, матриксный Gla-протеин, фактор роста фибробластов 23 (FGF-23), Клото, белки морфогенеза костей (BMP), в частности BMP-7; а активаторов – лептин, BMP-2, BMP-4, паратиреоидный гормон, кальцитриол и др. В настоящее время наиболее изученными биомолекулами, ассоциированными с кальциевым обменом, считаются остеопротегерин, остеопонтин, остеонектин, остеокальцин и белок Клото.

В работе описаны малоизученные эффекты ингибиторов кальцификации (склеростин, фетуин А, матриксный Gla-протеин, FGF-23, неорганический пирофосфат, BMP-7), а также некоторых активаторов кальцификации (лептин, BMP-2 и BMP-4, паратиреоидный гормон и кальцитриол).

Цель данного исследования заключается в анализе и систематизации данных о роли биомолекул в развитии и прогрессировании кальцификации сосудов при ССЗ.

Об авторах

Е. Д. Демина
Научно-исследовательский институт терапии и профилактической медицины (НИИТПМ) – филиал Института цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук (ИЦиГ СО РАН) Россия
Россия

Демина Елизавета Дмитриевна – мл. науч. сотрудник, лаборатория клинических биохимических и гормональных исследований терапевтических заболеваний, НИИТПМ – филиал ИЦиГ СО РАН.

630089, Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, 175/1


Конфликт интересов:

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи



В. С. Шрамко
Научно-исследовательский институт терапии и профилактической медицины (НИИТПМ) – филиал Института цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук (ИЦиГ СО РАН) Россия
Россия

Шрамко Виктория Сергеевна – канд. мед. наук, науч. сотрудник, лаборатория клинических биохимических и гормональных исследований терапевтических заболеваний; руководитель отдела клинико-биохимических и молекулярно-генетических методов исследований, НИИТПМ – филиал ИЦиГ СО РАН.

630089, Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, 175/1


Конфликт интересов:

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи



Список литературы

1. Бойцов С.А., Погосова Н.В., Аншелес А.А., Бадтиева В.А., Балахонова Т.В., Барбараш О.Л. и др. Кардиоваскулярная профилактика 2022. Российские национальные рекомендации. Российский кардиологический журнал. 2023;28(5):5452. DOI: 10.15829/1560-4071-2023-5452.

2. Бегун Д.Н., Морозова Т.А., Сурикова А.В. Болезни системы кровообращения как медико-социальная проблема. Молодой ученый. 2019;8(246):25–28.

3. Рагино Ю.И. Нестабильная атеросклеротическая бляшка и ее лабораторные биохимические маркеры. Новосибирск: Наука, 2019:120.

4. Сергиенко И.В., Аншелес А.А. Патогенез, диагностика и лечение атеросклероза: практические аспекты. Кардиологический вестник. 2021;16(1):64–72. DOI: 10.17116/Cardiobulletin20211601164.

5. Каштанова Е.В., Полонская Я.В., Рагино Ю.И. Кальцификация коронарных артерий и ее роль в развитии атеросклероза. Терапевтический архив. 2021;93(1):84–86. DOI: 10.26442/00403660.2021.01.200598.

6. Барбараш О.Л., Кашталап В.В., Шибанова И.А., Коков А.Н. Фундаментальные и прикладные аспекты кальцификации коронарных артерий. Российский кардиологический журнал. 2020;25(3S):40–49. DOI: 10.15829/1560-4071-20204005.

7. Torii S., Sato Y., Otsuka F., Kolodgie F.D., Jinnouchi H., Sakamoto A. et al. Eruptive calcified nodules as a potential mechanism of acute coronary thrombosis and sudden death. J. Am. Coll. Cardiol. 2021;77(13):1599–1611. DOI: 10.1016/j.jacc.2021.02.016.

8. Abdalrhim A.D., Marroush T.S., Austin E.E., Gersh B.J., Solak N., Rizvi S.A. et al. Plasma Osteopontin Levels and Adverse Cardiovascular Outcomes in the PEACE Trial. PLoS One. 2016;11(6):e0156965. DOI: 10.1371/journal.pone.0156965.

9. Morena M., Jaussent I., Dupuy A.M., Bargnoux A.S., Kuster N., Chenine L. et al. Osteoprotegerin and sclerostin in chronic kidney disease prior to dialysis: potential partners in vascular calcifications. Nephrol. Dial Transplant. 2015;30(8):1345–1356. DOI: 10.1093/ndt/gfv081.

10. Krajnc M., Pečovnik Balon B., Krajnc I. Non-traditional risk factors for coronary calcification and its progression in patients with type 2 diabetes: The impact of postprandial glycemia and fetuin-A. J. Int. Med. Res. 2019;47(2):846–858. DOI: 10.1177/0300060518814080.

11. Dedinszki D., Szeri F., Kozák E., Pomozi V., Tőkési N., Mezei T.R. et al. Oral administration of pyrophosphate inhibits connective tissue calcification. EMBO Mol. Med. 2017;9(11):1463–1470. DOI: 10.15252/emmm.201707532.

12. Lomashvili K.A., Narisawa S., Millán J.L., O’Neill W.C. Vascular calcification is dependent on plasma levels of pyrophosphate. Kidney Int. 2014;85(6):1351–1356. DOI: 10.1038/ ki.2013.521.

13. Marulanda J., Eimar H., McKee M.D., Berkvens M., Nelea V., Roman H. et al. Matrix Gla protein deficiency impairs nasal septum growth, causing midface hypoplasia. J. Biol. Chem. 2017;292(27):11400–11412. DOI: 10.1074/jbc.M116.76980224.

14. Alehagen U., Aaseth J., Larsson A., Alexander J. Decreased Concentration of Fibroblast Growth Factor 23 (FGF-23) as a Result of Supplementation with Seleniumand Coenzyme Q10 in an Elderly Swedish Population: ASub-Analysis. Cells. 2022;11(3):509. DOI: 10.3390/cells11030509.

15. Xiao Y., Peng C., Huang W., Zhang J., Xia M., Zhang Y. et al. Circulating fibroblast growth factor 23 is associated with angiographic severity and extent of coronary artery disease. PLoS One. 2013;8(8):e72545. DOI: 10.1371/journal.pone.0072545.

16. Bergmark B.A., Udell J.A., Morrow D.A., Jarolim P., Kuder J.F., Solomon S.D. et al. Klotho, fibroblast growth factor-23, and the renin-angiotensin system an analysis from the PEACE trial. Eur. J. Heart Fail. 2019;21(4):462–470. DOI: 10.1002/ejhf.1424.

17. Morrell N.W., Bloch D.B., ten Dijke P., Goumans M.J., Hata A., Smith J. et al. Targeting BMP signalling in cardiovascular disease and anaemia. Nat. Rev. Cardiol. 2016;13(2):106– 120. DOI: 10.1038/nrcardio.2015.156.

18. Szulc P., Amri E.Z., Varennes A., Panaia-Ferrari P., Fontas E., Goudable J. et al. Positive Association of High Leptin Level and Abdominal Aortic Calcification in Men – The Prospective MINOS Study. Circ. J. 2018; 82(12):2954–2961. DOI: 10.1253/circj.CJ-18-0517.

19. Yang P., Troncone L., Augur Z.M., Kim S.S.J., McNeil M.E., Yu P.B. The role of bone morphogenetic protein signaling in vascular calcification. Bone. 2020; 141:115542. DOI: 10.1016/j.bone.2020.115542.

20. Scimeca M., Anemona L., Granaglia A., Bonfiglio R., Urbano N., Toschi N. et al. Plaque calcification is driven by different mechanisms of mineralization associated with specific cardiovascular risk factors. Nutr. Metab. Cardiovasc. Dis. 2019; 29(12):1330–1336. DOI: 10.1016/j.numecd.2019.08.009.

21. Carrillo-López N., Panizo S., Alonso-Montes C., MartínezArias L., Avello N., Sosa P. et al. High-serum phosphate and parathyroid hormone distinctly regulate bone loss and vascular calcification in experimental chronic kidney disease. Nephrol. Dial Transplant. 2019;34(6):934–941. DOI: 10.1093/ndt/gfy287.

22. Hahn D., Hodson E.M., Craig J.C. Interventions for metabolic bone disease in children with chronic kidney disease. Cochrane Database Syst. Rev. 2015; 2015(11):CD008327. DOI: 10.1002/14651858.CD008327.pub2.

23. He F., Li L., Li P., Deng Y., Yang Y., Deng Y. et al. Cyclooxygenase-2/sclerostin mediates TGF-β1-induced calcification in vascular smooth muscle cells and rats undergoing renal failure. Aging (Albany NY). 2020;12:21220–21235. DOI: 10.18632/aging.103827.

24. Yu S., Huang W., Zhang H., Guo Y., Zhang B., Zhang G. et al. Discovery of the small molecular inhibitors against sclerostin loop3 as potential anti-osteoporosis agents by structural based virtual screening and molecular design. Eur. J. Med. Chem. 2024;271:116414. DOI: 10.1016/j.ejmech.2024.116414.

25. Galea G.L., Lanyon L.E., Price J.S. Sclerostin’s role in bone’s adaptive response to mechanical loading. Bone. 2017;96:38– 44. DOI: 10.1016/j.bone.2016.10.008.

26. He W., Li C., Chen Q., Xiang T., Wang P., Pang J. Serum sclerostin and adverse outcomes in elderly patients with stable coronary artery disease undergoing percutaneous coronary intervention. Aging Clin. Exp. Res. 2020;32(10):2065–2072. DOI: 10.1007/s40520-019-01393-2.

27. Yang C.Y., Chang Z.F., Chau Y.P., Chen A., Yang W.C., Yang A.H. et al. Circulating Wnt/β-catenin signalling inhibitors and uraemic vascular calcifications. Nephrol. Dial Transplant. 2015;30(8):1356–1363. DOI: 10.1093/ndt/gfv043.

28. Krishna S.M., Seto S.W., Jose R.J., Li J., Morton S.K., Biros E. et al. Wnt signaling pathway inhibitor sclerostin inhibits angiotensin ii-induced aortic aneurysmand atherosclerosis. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2017;37(3):553–566. DOI: 10.1161/ATVBAHA.116.308723.

29. Klingenschmid G., Tschiderer L., Himmler G., Rungger G., Brugger S., Santer P. et al. Associations of Serum Dickkopf-1 and Sclerostin With Cardiovascular Events: Results From the Prospective Bruneck Study. J. Am. Heart Assoc. 2020;9(6):e014816. DOI: 10.1161/JAHA.119.014816.

30. Kanbay M., Solak Y., Siriopol D., Aslan G., Afsar B., Yazici D. et al. Sclerostin, cardiovascular disease and mortality: a systematic review and meta-analysis. Int. Urol. Nephrol. 2016;48(12):2029–2042. DOI: 10.1007/s11255-016-1387-8.

31. Brylka L., Jahnen-Dechent W. The role of fetuin-A in physiological and pathological mineralization. Calcif. Tissue Int. 2013;93(4):355–364. DOI: 10.1007/s00223-012-9690-6.

32. Дрыгина Л.Б., Хирманов В.Н. Клиниколабораторные маркеры кальцифицирующего атеросклероза. Медицинский алфавит. 2021;1(30):43–47. DOI: 10.33667/2078-56312021-30-43-47.

33. Laugsand L.E., Ix J.H., Bartz T.M., Djousse L., Kizer J.R., Tracy R.P. et al. Fetuin-A and risk of coronary heart disease: A Mendelian randomization analysis and a pooled analysis of AHSG genetic variants in 7 prospective studies. Atherosclerosis. 2015;243(1):44–52. DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2015.08.031.

34. Kubota N., Testuz A., Boutten A., Robert T., Codogno I., Duval X. et al. Impact of fetuin-A on progression of calcific aortic valve stenosis The COFRASA GENERAC study. Int. J. Cardiol. 2018;265:5257. DOI: 10.1016/j.ijcard.2018.03.070.

35. Махиева А.Т., Мамбетова А.М. Фетуин А – маркер оценки риска развития минерально-костных нарушений и формирования сердечно-сосудистой кальцификации у больных хронической болезнью почек 5Д стадии. Нефрология. 2022;26(4):105–109. DOI: 10.36485/1561-6274-2022-26-4-105-109.

36. Дрыгина Л.Б., Хирманов В.Н. Кальциноз коронарных артерий и метаболические нарушения у ликвидаторов последствий аварии на Чернобыльской АЭС. Медико-биологические и социально-психологические проблемы безопасности в чрезвычайных ситуациях. 2021;(2):11–17. DOI: 10.25016/2541-7487-2021-0-2-11-17.

37. Bjørklund G., Svanberg E., Dadar M., Card D.J., Chirumbolo S., Harrington D.J. et al. The role of matrix gla protein (MGP) in vascular calcification. Curr. Med. Chem. 2020;27(10):1647–1660. DOI: 10.2174/0929867325666180716104159.

38. Chin K.Y. The Relationship between Vitamin K and Osteoarthritis: A Review of Current Evidence. Nutrients. 2020;12(5):1208. DOI: 10.3390/nu12051208.

39. Durham A.L., Speer M.Y., Scatena M., Giachelli C.M., Shanahan C.M. Role of smooth muscle cells in vascular calcification: implications in atherosclerosis and arterial stiffness. Cardiovasc. Res. 2018;114(4):590–600. DOI: 10.1093/cvr/cvy010.

40. Mayer O. Jr., Seidlerová J., Bruthans J., Filipovský J., Timoracká K., Vaněk J. et al. Desphospho-uncarboxylated matrix Gla-protein is associated with mortality risk in patients with chronic stable vascular disease. Atherosclerosis. 2014;235(1):162–168. DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2014.04.027.

41. Capoulade R., Côté N., Mathieu P., Chan K.L., Clavel M.A., Dumesnil J.G. et al. Circulating levels of matrix gla protein and progression of aortic stenosis: a substudy of the Aortic Stenosis Progression Observation: Measuring Effects of rosuvastatin (ASTRONOMER) Trial. Can. J. Cardiol. 2014;30(9):1088–1095. DOI: 10.1016/j.cjca.2014.03.025.

42. Berlot A.A., Fu X., Shea M.K., Tracy R., Budoff M., Kim R.S. et al. Matrix Gla protein and the long-term incidence and progression of coronary artery and aortic calcification in the Multi-Ethnic Study of Atherosclerosis. Atherosclerosis. 2024;392:117505. DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2024.117505.

43. Sheng K., Zhang P., Lin W., Cheng J., Li J., Chen J. Association of Matrix Gla protein gene (rs1800801, rs1800802, rs4236) polymorphism with vascular calcification and atherosclerotic disease: a meta-analysis. SciRep. 2017;7(1):8713. DOI: 10.1038/s41598-017-09328-5.

44. Lutsey P.L., Alonso A., Selvin E., Pankow J.S., Michos E.D., Agarwal S.K. et al. Fibroblast growth factor-23 and incident coronary heart disease, heart failure, and cardiovascular mortality: the Atherosclerosis Risk in Communities study. J. Am. Heart Assoc. 2014;3(3):e000936. DOI: 10.1161/JAHA.114.000936.

45. Kestenbaum B., Sachs M.C., Hoofnagle A.N., Siscovick D.S., Ix J.H., Robinson-Cohen C. et al. Fibroblast growth factor-23 and cardiovascular disease in the general population: the Multi-Ethnic Study of Atherosclerosis. Circ. Heart Fail. 2014;7(3):409–417. DOI: 10.1161/CIRCHEARTFAILURE.113.000952.

46. Turan M.N., Kircelli F., Yaprak M., Sisman A.R., Gungor O., Bayraktaroglu S. et al. FGF-23 levels are associated with vascular calcification, but not with atherosclerosis, in hemodialysis patients. Int. Urol. Nephrol. 2016;48(4):609–617. DOI: 10.1007/s11255-016-1231-1.

47. Holden R.M., Hétu M.F., Li T.Y., Ward E., Couture L.E., Herr J.E. et al. The heart and kidney: abnormal phosphate homeostasis is associated with atherosclerosis. J. Endocr. Soc. 2018;3(1):159–170. DOI: 10.1210/js.2018-00311.

48. Takashi Y., Wakino S., Minakuchi H., Ishizu M., Kuroda A., Shima H. et al. Circulating FGF23 is not associated with cardiac dysfunction, atherosclerosis, infection or inflammation in hemodialysis patients. J. Bone Miner. Metab. 2020;38(1):70–77. DOI: 10.1007/s00774-019-01027-7.

49. Murcia Casas B., Carrillo Linares J.L., Baquero Aranda I., Rioja Villodres J., Merino Bohórquez V., González Jiménez A. et al. Lansoprazole Increases Inorganic Pyrophosphate in Patients with Pseudoxanthoma Elasticum: A Double-Blind, Randomized, Placebo-Controlled Crossover Trial. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(5):4899. DOI: 10.3390/ijms24054899.

50. Bartstra J.W., de Jong P.A., Kranenburg G., Wolterink J.M., Isgum I., Wijsman A. et al. Etidronate halts systemic arterial calcification in pseudoxanthoma elasticum. Atherosclerosis. 2020;292:37–41. DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2019.10.004.

51. Jansen R.S., Duijst S., Mahakena S., Sommer D., Szeri F., Váradi A. et al. ABCC6-mediated ATP secretion by the liver is the main source of the mineralization inhibitor inorganic pyrophosphate in the systemic circulation-brief report. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2014;34(9):1985–1989. DOI: 10.1161/ATVBAHA.114.304017

52. Maruyama S., Visser H., Ito T., Limsakun T., Zahir H., Ford D. et. al. Phase I studies of the safety, tolerability, pharmacokinetics, and pharmacodynamics of DS-1211, a tissue-nonspecific alkaline phosphatase inhibitor. Clin. Transl. Sci. 2022;15(4):967–980. DOI: 10.1111/cts.13214.

53. Gu W., Wei Y., Tang Y., Zhang S., Li S., Shi Y. et al. Supplement of exogenous inorganic pyrophosphate inhibits atheromatous calcification in Apolipoprotein E knockout mice. Heliyon. 2023;9(8):e19214. DOI: 10.1016/j.heliyon.2023.e19214.

54. Rathan S., Yoganathan A.P., O’Neill C.W. The role of inorganic pyrophosphate in aortic valve calcification. J. Heart Valve Dis. 2014;23(4):387–394.

55. Villa-Bellosta R. Synthesis of extracellular pyrophosphate increases in vascular smooth muscle cells during phosphate-induced calcification. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2018;38(9):2137–2147. DOI: 10.1161/ATVBAHA.118.311444. PMID: 30002059.

56. Rattazzi M., Bertacco E., Iop L., D’Andrea S., Puato M., Buso G. et al. Extracellular pyrophosphate is reduced in aortic interstitial valve cells acquiring a calcifying profile: implications 2014;237(2):568– 576. DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2014.10.027.

57. Tang H., Zhang X., Xue G., Xu F., Wang Q., Yang P. et al. The biology of bone morphogenetic protein signaling pathway in cerebrovascular system. Chin. Neurosurg. J. 2021;7(1):36. DOI: 10.1186/s41016-021-00254-0.

58. Aluganti Narasimhulu C., Singla D.K. The role of bone morphogenetic protein 7 (BMP-7) in inflammation in heart diseases. Cells. 2020;9(2):280. DOI: 10.3390/cells9020280.

59. Elmadbouh I., Singla D.K. BMP-7 Attenuates inflammation-induced pyroptosis and improves cardiac repair in diabetic cardiomyopathy. Cells. 2021;10(10):2640. DOI: 10.3390/cells10102640.

60. Merino D., Villar A.V., García R., Tramullas M., Ruiz L., Ribas C. et al. BMP-7 attenuates left ventricular remodelling under pressure overload and facilitates reverse remodelling and functional recovery. Cardiovasc. Res. 2016;110(3):331–345. DOI: 10.1093/cvr/cvw076.

61. Yu X., Guan W., Zhang Y., Deng Q., Li J., Ye H. et al. Large-scale gene analysis of rabbit atherosclerosis to discover new biomarkers for coronary artery disease. Open Biol. 2019;9(1):180238. DOI: 10.1098/rsob.180238.

62. Singla D.K., Singla R., Wang J. BMP-7 Treatment increases m2 macrophage differentiation and reduces inflammation and plaque formation in Apo E-/-mice. PLoS One. 2016;11(1):e0147897. DOI: 10.1371/journal.pone.0147897.

63. Urbina P., Singla D.K. BMP-7 attenuates adverse cardiac remodeling mediated through M2 macrophages in prediabetic cardiomyopathy. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2014;307(5):H762–772. DOI: 10.1152/ajpheart.00367.2014.

64. Wang C., Chang L., Wang J., Xia L., Cao L., Wang W. et al. Leptin and risk factors for atherosclerosis: A review. Medicine (Baltimore). 2023;102(46):e36076. DOI: 10.1097/MD.0000000000036076.

65. Sweeney T., Ogunmoroti O., Ndumele C.E., Zhao D., Varma B., Allison M.A. et al. Associations of adipokine levels with the prevalence and extent of valvular and thoracic aortic calcification: The Multi-Ethnic Study of Atherosclerosis (MESA). Atherosclerosis. 2021;338:15–22. DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2021.11.002.

66. Myasoedova V.A., Bertolini F., Valerio V., Moschetta D., Massaiu I., Rusconi V. et al. The Role of Adiponectin and Leptin in Fibro-Calcific Aortic Valve Disease: A Systematic Review and Meta-Analysis. Biomedicines. 2024;12(9):1977. DOI: 10.3390/biomedicines12091977.

67. Criqui M.H., Denenberg J.O., McClelland R.L., Allison M.A., Ix J.H., Guerci A. et al. Abdominal aortic calcium, coronary artery calcium, and cardiovascular morbidity and mortality in the Multi-Ethnic Study of Atherosclerosis. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2014;34(7):1574–1579.

68. Liu Y., Gu Y., Shen Y., Lin B., Li Y., He X. et al. association between serum leptin level and calcific aortic valve disease. J. Am. Heart Assoc. 2019;8(19):e012495. DOI: 10.1161/JAHA.119.012495.

69. Roy N., Haddad D., Yang W., Rosas S.E. Adipokines and coronary artery calcification in incident dialysis participants. Endocrine. 2022;77(2):272–280. DOI: 10.1007/s12020-02203111-x.

70. Yang H., Guo W., Li J., Cao S., Zhang J., Pan J. et al. Leptin concentration and risk of coronary heart disease and stroke: A systematic review and meta-analysis. PloS One. 2017;12(3):e0166360. DOI: 10.1371/journal.pone.0166360.

71. Patidar A., Singh D.K., Winocour P., Farrington K., Baydoun A.R. Human uraemic serum displays calcific potential in vitro that increases with advancing chronic kidney disease. Clin. Sci. (Lond.). 2013;125:237–245. DOI: 10.1042/CS20120638.

72. Zhang M., Sara J.D., Wang F.L., Liu L.P., Su L.X., Zhe J. et al. Increased plasma BMP-2 levels are associated with atherosclerosis burden and coronary calcification in type 2 diabetic patients. Cardiovasc Diabetol. 2015;14:64. DOI: 10.1186/s12933-015-0214-3.

73. Wang N., Guo Y., Dong Y., Li X., Liu Q., Liu Q. et al. Association of plasma bone morphogenetic protein-4 levels with arterial stiffness in hypertensive patients. J. Clin. Lab. Anal. 2022;36(11):e24746. DOI: 10.1002/jcla.24746.

74. Feng M., Xu M., Wang Q., Xia S., Yu C., Li M. et al. Association of parathyroid hormone with risk of hypertension and type 2 diabetes: a dose-response meta-analysis. BMC Cardiovasc. Disord. 2024;24(1):13. DOI: 10.1186/s12872-023-03682-1.

75. Hagström E., Michaëlsson K., Melhus H., Hansen T., Ahlström H., Johansson L. et al. Plasma-parathyroid hormone is associated with subclinical and clinical atherosclerotic disease in 2 community-based cohorts. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2014;34(7):1567–1573. DOI: 10.1161/ATVBAHA.113.303062.

76. Fernández-Villabrille S., Martín-Vírgala J., Martín-Carro B., Baena-Huerta F., González-García N., Gil-Peña H. et al. RANKL, but Not R-spondins, is involved in vascular smooth muscle cell calcification through LGR4 interaction. Int. J. Mol. Sci. 2024;25(11):5735. DOI: 10.3390/ijms25115735.

77. Hsu S., Prince D.K., Williams K., Allen N.B., Burke G.L., Hoofnagle A.N. et al. Clinical and biomarker modifiers of vitamin D treatment response: the Multi-Ethnic Study of Atherosclerosis. Am. J. Clin. Nutr. 2022;115(3):914–924. DOI: 10.1093/ajcn/nqab390.

78. Robinson-Cohen C., Hoofnagle A.N., Ix J.H., Sachs M.C., Tracy R.P., Siscovick D.S. Racial differences in the association of serum 25-hydroxyvitamin D concentration with coronary heart disease events. JAMA. 2013;310(2):179–188. DOI: 10.1001/jama.2013.7228.

79. Dudenkov D.V., Mara K.C., Petterson T.M., Maxson J.A., Thacher T.D. Serum 25-Hydroxyvitamin D Values and Risk of All-Cause and Cause-Specific Mortality: A Population-Based Cohort Study. Mayo Clin. Proc. 2018;93(6):721–730. DOI: 10.1016/j.mayocp.2018.03.006.

80. Amrein K., Quraishi S.A., Litonjua A.A., Gibbons F.K., Pieber T.R., Camargo C.A. et al. Evidence for a U-shaped relationship between prehospital vitamin D status and mortality: a cohort study. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2014;99(4):1461– 1469. DOI: 10.1210/jc.2013-3481.

81. Sempos C.T., Durazo-Arvizu R.A., Dawson-Hughes B., Yetley E.A., Looker A.C., Schleicher R.L. et al. Is there a reverse J-shaped association between 25-hydroxyvitamin D and allcause mortality? Results from the U.S. nationally representative NHANES. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2013;98(7):3001– 3009. DOI: 10.1210/jc.2013-1333.


Рецензия

Для цитирования:


Демина Е.Д., Шрамко В.С. Роль биомолекул в развитии и прогрессировании кальцификации сосудов при сердечно-сосудистых заболеваниях. Бюллетень сибирской медицины. 2025;24(3):138-148. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2025-3-138-148

For citation:


Demina E.D., Shramko V.S. The role of biomolecules in the development and progression of vascular calcification in cardiovascular diseases. Bulletin of Siberian Medicine. 2025;24(3):138-148. (In Russ.) https://doi.org/10.20538/1682-0363-2025-3-138-148

Просмотров: 14


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1682-0363 (Print)
ISSN 1819-3684 (Online)